QB/T 2491-2000 低聚异麦芽糖 QB/T2491-2000 标准下载解压密码：www.bzxz.net

QB/T2491--2000
低异麦芽糖是功能性低聚糖的一种，主要功能性成分为异麦芽糖、潘糖、异麦芽三糖及四糖以上的低糖。
本标准的试验方法中感官要求干物质（固形物）pH、透光率的测定采用QB/T23191997《液体葡萄糖》;水分、溶解度的测定采用 QB/T 2320—1997≤麦芽糊精》。葡节糖转苷酵是重要的原辅材料之一，活力的测定没有统一的方法，无法正确评价的质量，因此,在附录A中给出了葡群糖转苷的定义和测定方法。本标准的附录 A 为提示的附录。本标准由国家轻工业局提出。
本标雄由全国食品发标准化中心归口。本标准起草单位：中国食品发酵工业研究所、江苏省微生物研究所、山东环宇集团公司、上海正广和葡药糖广、新疆纵横股份有限公司、鼠东天绿源生物工程公司。本标准主要起草人：鲍元兴、郭新光、杨维亚、刘宗利、丁盛金、孙兆龙、刘永。205
1范围
中华人民共和国轻工行业标准
低聚异麦芽糖
QB/T 2491--2000
本标准规定了低聚异麦芽糖的定义和分类、技术要求、试验方法、检验规则和标志、包装、运输、贮存要求。
本标准适用于以淀粉为原料、酶法生产的 IMO-50 型低聚异麦芽糖。2引用标准
下列标准所包含的条文，通过在本标准中引用而构成为本标准的条文。本标准出版时，所示版本均为有效。所有标准都会被修订，使用本标准的各方应探讨使用下列标准最新版本的可能性。GB191—2000包装图示标志
GB/T601一1988化学试剂滴定分析（容量分析）用标准溶液的制备GB/T603一1988化学试剂试验方法中所用制剂及制品的制备GB4789.21994食品卫生微生物学检验菌落总数测定GB4789.3—1994食品卫生微生物学检验大肠菌群测定GB 4789.4--1994
食品卫生微生物学检验沙门氏菌检验GB/T5009.11—1996食品中总砷的测定方法GB/T 5009.12—1996
食品中铅的测定方法
GB/T6682—1992分析实验室用水规格和试验方法GB7718—1994食品标签通用标准QB/T2319~1997液体葡萄糖
QB/T 2320-1997免费标准bzxz.net
3定义和分类
3.1定义
麦芽糊精
3.1.1低聚异麦芽糖 isomaltooligosaccharide，简称 IMO是淀粉糖的-种，主要成分为α-1,6糖苷键结合的异麦芽糖（TG2)、潘糖（P）、异麦芽三糖（IG：)及四糖以上(G,)的低桑糖。
3.1.2IMO-50型
IG2+P+IG:+G,≥50%（占总糖）的产品。3.2分类
按形态分为糖浆和糖粉。
4技术要求
4.1感官要求
糖浆为无色或浅黄色，透明的粘稠液体。甜味柔和，无异味，无肉眼可见杂质。国家轻工业局2000-10-31批准
2001-04-01实施
QB/T 2491--2000
糖粉为白色无定型粉末。味甜柔和，无异味，无斑龈可见杂质。4.2理化要求
应符合表1规定。
水分，%
干物膦(固形物),%
透光率，%
溶解度，%
糊精，%
硫酸灰分,%
IMO含量（古总糖），%
IGz+P+IG含量(占总糖）,%
4.3卫生要求
应符合表2规定。
碑(以As 计），mz/kg
铅（以Pb计)，mg/kg
落总数cfu/或mL)
大肠菌群，MPN/(100g或100mL)
致病菌（沙门氏菌）
试验方法
不得检出
试验方法中所用水应符合GB/T6682三级（含三级）以上的水，所用试剂除特殊注明外均为分析纯。
5.1感宫检验
5.1.1糖浆
取药30ml.样品于无色，洁净干燥的样品杯（或50mL小烧杯）中，于明亮处，用肉龈观察其色泽和设度，检查其有无肉眼可见杂质，并用玻璃棒取适量样罐放人口手，品尝其滋味（品尝第二个样品前，必须用清水激口）。好记录。5.1.2糖粉
取适量样品，在自然光的光线下，用肉观赛样的颜色和形态，有无杂质：取少量样品，放人口中，仔细品尝其味（品尝第二个样品前，须用清水漱口）、做好记录。5.2水分
按QB/T2320--1997中6.2.1测定。207
5.3干物质（固形物）
QB/T 2491—2000
按QB/T2319-1997中 5.2.2测定。5.4 pH
按QB/T2319-1997中 5.2.3测定。5.5透光率
按QB/T2319-1997中5.2. 4测定。5.6溶解度
按 QB/T 2320--1997 中 6.2. 3 测定。5.7糊精
5.7.1方法提要
糊精经盐酸水解为葡药糖后，在加热条件下，直接滴定标定过的费林溶液，以次甲基蓝为指示剂，根据样品液消耗体积，计算葡药糖含量，再换算成糊精含量。5.7.2试剂
5.7.2.11g/L葡葡糖标准溶液：准确称取于100℃土2℃烘干至恒重的基准无水葡葡糖1g，称准至0.0001g，加水溶解，再加人5mL盐酸，移人1000mL容量瓶中并稀释至刻度，播匀，备用，5.7.2.2费林A液：称取硫酸铜15g、次甲基蓝0.05g，加水溶解，移人1000mL容量瓶中并用水稀释至刻度，摇勾，放置两天后过滤于棕色瓶中，5.7.2.3赞林B液：称取酒石酸钾钠50g、氢氧化钠75g，溶于水中，再加人4g亚铁氰化钾，完全溶解后，移人1000mL容量瓶中并用水稀释至刻度，贮存于橡胶塞玻璃瓶中，5.7.2.4无水乙醇
5.7.2.580%乙醇水溶液：用无水乙醇配制；5.7.2.6浓盐酸；
5.7.2.7200g/L氢氧化钠溶液：称取20g氢氧化钠，用水定容至100mL。5.7.3分析步骤
5.7.3.1费林溶液的标定
先吸取费林B液、再吸取费林A液各5.0mL于150mL锥形瓶中，加水10mL，加入玻璃珠3粒，置于铺有石棉网的电炉上加热，控制瓶中液体在120s土15s内沸腾，并保持微沸，以葡萄糖标准溶液滴定至无色为终点，整个滴定操作应在 3min内完成。记录消耗葡药糖标准溶液的体积。5.7.3.2费林溶液A、B各5mL相当于葡萄糖的质量按式（1)计算：RP=miXu
式中：RP.费林溶液A、B各5mL相当于葡萄糖的质量，g;m1-—称取基准无水葡萄糖的量，g; -—消耗葡葡糖标准溶液的体积,mL;1000-一配制葡萄糖标准溶液的总体积，mL。5.7.3.3试样的制备
:（i）
准确称取样品1~2g，称准至0.01g，置于烧杯中，用16mL温水溶解，在搅拌下缓缓加人无水乙醇64mL，放置12h以上，使糊精沉淀，用滤纸过滤，并用少量80%乙醇分两次洗涤滤纸和沉淀。将滤纸和沉淀部分用70ml.热水洗入250mL锥形瓶中，加浓盐酸5mL，在121℃C（100kPa压力）高压锅内蒸煮30min，使糊精水解为葡萄糖，自然冷却后取出，过滤，用200g/L氢氧化钠溶液中和，用pH试纸判断终点，洗入250mL容量瓶中，用水定容至刻度。5.7.3.4试样的测定
以试样代替葡萄糖标准溶液，按5.7.3.1进行滴定，测定其葡药糖含量。208
5.7.3.5分析结果的表述
样品的糊精含量按式(2)计算：
QB/T 2491--2000
X100X0. 9
m2×250
式中：X，——样品的糊精含量，g/100g；RP-费林溶液A、B各5mL 相当于葡萄糖的质量，名?m2——取样量g;
250-—配制样液的总体积，mL，V2———滴定消耗试样的体积，mL；0.9——换算系数
计算结果保留至一位小数。
5.7.3.6允许差
同一样品两次测定结果之差，不得超过平均值的5%。5.8硫酸灰分
按QB/T 2319—1997中 5.2.8测定。5.9 IMO 含量
5.9.1高效液相色谱法(HPLC)
5.9.1.2方法提要
同一时刻进人色谱柱的各组分，由于在流动相和固定相之间溶解、吸附、渗透或离子交换等作用的不同，随流动相在色谱柱两相之间进行反复多次的分配，由于各组分在色谱柱中的移动速度不同，经过一定长度的色谱柱后，彼此分离开来，按顺序流出色谱柱，进人信号检测器，在记录仪上或数据处理装置上显示出各组分的谱峰数值，根据保留时间用归一化法或外标法定量。5.9.1.3仪器
5.9.1.3.1高效液相色谱仪（配有示差折光检测器和柱恒温系统），5.9.1.3.2流动相真空抽滤脱气装置及0.2μm、0.45um微孔膜；5.9.1.3.3色谱柱
a）钙型阳离子交换树脂柱：AminexHPX-42A（BIO-RAD），填料粒径：5um；柱尺寸；Φ7.8mm×300mm，或分析效果相类似的其他色谱柱；b）氨基键合柱：TSKgelAmide-80,填料粒径：5μm；柱尺寸：Φ4.6mm×250mm或分析效果相类似的其他色谱柱；
5.9.1.3.4分析天平：感量0.0001g；5.9.1.3.5微量进样器：10L。
5.9.1.4试剂
5.9.1.4.1水：二次蒸馏水或超纯水；5.9.1.4.2乙腈：色谱纯；
5.9.1.4.3葡萄糖、麦牙糖、异麦芽糖、麦芽三糖、潘糖、异麦芽三糖、麦芽四糖、异麦芽四糖、麦芽五糖、麦芽六糖的标准品，均为Sigma试剂。分别用水配成0.5%的水溶液。5.9.1.5分析步骤
5.9.1.5.1双柱法（仲裁法）
a）试样的制备
称取糠浆或糖粉样品5g，称准至0.0001g，加水溶解，移人100mL容量瓶中并用水定容至刻度，用0.2μm或0.45um水相微孔膜过滤，滤液备用。209
b）试样的测定
QB/T2491—2000
钙型阳离子交换树脂柱：流动相为纯水。在测定的前一天接通示差折光检测器电源，预热稳定，装上色谱柱，调柱温至85℃，以0.1ml/min的流速通人流动相平衡过夜。正式进样分析前，将所用流动相输人参比池20min以上，再恢复正常流路使流动相经过样品池，调节流速至0.6mL/min，走基线，待基线稳定后即可进样，进样量为5~~10μL。将葡葡糖、麦芽糖、麦芽三糖、麦芽四糖、麦芽五糖、麦芽六糖的标准溶液和制备好的试样分别进样。根据标准品的保留时间定性样品中各种糖组份的色谱峰。根据样品的蜂面积，以归一化法计算各种糖组分的百分含量。
基键合柱：流动相为乙睛：水=67：33。在测定的前一天接通示差折光检测器电源，预热稳定，安上色谱柱，调柱温至75℃，以0.1mL/min的流速通人流动相平衡过夜。正式进样分析前，将所用流动相输人参比池20min以上，再恢复正常流路使流动相经过样品池，调节流速至1.OmL/min，走基线，待基线走稳后即可进样，进样量为5～10μL。将葡萄糖、麦芽糖、麦芽三糖、异麦芽糖、潘糖、异麦芽三糖、麦芽四糖、异麦芽四糖、麦芽五糖、麦芽六糖的标准溶液和制备好的试样分别进样。根据标准品的保留时间定性样品中各种糖组分的色谱峰。根据样品的峰面积，以归一化法计算各种糖组分的百分含量。c）分析结果的表述
钙型阳离子交换树脂柱，样品组分DP：占总糖的百分含量按式（3)计算：DP,=
式中：DP,样品中组分i占总糖的百分含量，%，A,—样品中组分i的蜂面积，
ZA;-——样品中各组分峰面积之和。氨基键合柱，样品中葡萄糖占总糖的百分含量按式(4)计算：G=DP
样品中异麦芽糖占总糖的百分含量按式(5)计算：AG2
IG,Acz+Aice
样品中潘糖占总糖的百分含量按式（6)计算：Ap
P=Aca+Ap+Aics
样品中异麦芽三糖占总糖的百分含量按式（7)计算：AiG3
AG3+Ap+AiG3
样品中四糖以上占总糖的百分含量按式(8)计算：G,=100-DP1-DP2-DP:
式中：G(DP,)
样品中葡葡糖占总糖的百分含量，%；IG2 --
样品中异麦芽糖占总糖的百分含量，%；AIG2—-样品中异麦芽糖的峰面积；Ac2
样品中麦芽糖的峰面积；
样品中二糖占总糖的百分含量，%；P--样品中潘糖占总糖的百分含量，%；Ap
-样品中潘糖的峰面积；
Ac3——-样品中麦芽三糖的蜂面积;210
（3）
（4）
（5）
（6）
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AIG3—样品中异麦芽三糖的峰面积；DP：-—一样品中三糖占总糖的百分含量，%;一样品中异麦芽三糖占总糖的百分含量，%；IG3
G一样品中四糖以上占总糖的百分含量，%。计算结果保留至整数。
d）允许差
同一样品两次测定结果之差，不得超过平均值的5%。5.9.1.5.2单柱法
本法适用于五、六糖及糊精含量很低的低骤异麦芽糖。a）试样的制备
同 5. 9.1.5.1a)。
b）试样的测定
1）标准溶液及标准曲线
用每种糖的标准品在0.5～10mg/mL范围内配制6个不同浓度的标准液系列，分别进样后，以标样浓度对峰面积作标准曲线。线性相关系数应为0.9990以上。2）试样的测定
同5.9.1.5.1b)中氨基键合柱的测定，最后以外标法计算各种糖组分的百分含量。c）分析结果的表述
样品中各种糖的含量按式（9)计算：A x
样品中某种糖分的百分含量，g/100g（或mL）；式中·X.—
A,-——样品中某种糖分的蜂面积；m.
-标准样品中某种糖分标准品的质量，g；V.—标准样品稀释体积，mL；
A,标准样品中某种糖分标准品的峰面积；m—样品的质量·g;
V—样品的稀释体积，mL。
计算结果保留至整数。
d）允许差
同样品两次测定结果之差，不得超过平均值的5%。5.9.2薄层色谱法
5.9.2.1仪器
5.9.2.1.1GF254硅胶板：规格100×100mm；5. 9. 2. 1.2
层析缸：100mmX200mm;
5.9.2.1.3
微量进样器：5μl
5.9.2.1.4烘箱；
5.9.2.1.5
CS-930双波长色谱扫描仪；
干燥器：用变色硅胶作干燥剂；5. 9.2.1. 6
电吹风：300～500W；
5. 9. 2. 1.7
5.9.2.1.8培养m：15cm。
5.9.2.2 试剂
QB/T 2491-2000
5.9.2.2.1葡萄糖、麦芽糖、异麦芽糖、麦芽兰、潘糖、昇麦芽兰糖、麦芽四糖、异麦芽四糖、麦芽五糖的标准品，均为Siga试剂：
5. 9. 2.2. 285%磷
5.9.2.2.3展开剂，正丁醇：冰乙酸*水=2#1：15.9.2.2.4显色剂A液：4g二苯胺+100mL两酮，5.9.2.2.5显色剂B液：4mL苯胺+100mL两酮；显色前，将A液100mL、B液100mL.混合后加人85%磷酸20mL，边加边摇动，使流淀全部溶解，该显色液现用现配。
5.9.2.3标准溶液的制备
5.9.2,3.1标准游液1：将各标准品（5.9.2.2.1)分别制戒10g/1。的标准游液。5. 9.2.3.2标准浴液 I将衡药糖、麦芽糖、麦芽三糖、麦芽四糖、麦芽五糖标准溶液等体积混合(ml)。5.9.2.3.3标准溶液1：将麦芽糖、异麦芽糖、麦芽三糖、异麦芽三糖、潘糖标准溶液等体积滋合（m2）。5.9.2.4分析步骤
a）将GF254硅胶板置于105℃烘箱内活化1.5h，量干燥器内冷却至室溢。6）将样品配成10~20g/L的溶液，在距硅胶板边1cm处，用微量进样器点样0.51L。用同样方法进行 ml、m2标准溶液的点样。c）于层析缸内倒人展开剂，将硅胶板置于层析缸内展开，展开后，置于通风柜内阴干或用电吹风吹干。再重复展开两次（共展开兰次)。d）将硅胶板漫人显色剂中，立即拿出，擦干背面的显色剂，吹干。然后将硅胶板放人80℃烘箱内烘15min~30min显色。
e）将整色后的硅胶板用CS-930双波长色谱扫描仪在640nm下扫描，根据保留时间对艇标准品定性并定量。
按GB/T 5009.11测定。
按GB/T 5009.12测定。
5.12菌落总数
按 GB/T 4789.2 测定
5.13大肠菌群
按GB/T4789.3测定。
5.14沙门氏菌
按 GB/T 4789. 4 测定。
6检验规则
6.1产品以一次投料为一批，最大批量不得超过班产量，6.2每批产品必须经生产厂的检验部门检验合格后出厂，并附有产品质量合格证。6.3取样方法
6.3.1按表3、表4规定抽取样本。212
批量范图，箱
100以下
100~250
251~500
500以上
批量范围，桶
50以下
50~100
100以上
6.3.2槽车装产品每车必检。
QB/T2491—2000
抽取样本数，箱
抽取单位包装数，瓶
抽取样本数，桶
6.3.3桶装和槽车装产品须从液面10cm以下处抽取样品。取样器必须符合食品卫生标准。6.3.4槽车装产品每份取样量不得少于2kg，桶装产品每份取样量不得少于1kg，瓶装产品取样总量不得少于600g。
6.3.5抽取的样品混匀后分作两份，签封。粘贴标签，在标签上注明产品名称、生产厂名及地址、批号、取样日期及地点、取样人姓名。一份送化验室进行检验，另份封存，保留半个月备查。需要做微生物检验时，取样器和玻璃瓶应事先灭菌（样品不得接触瓶口）。6.4出厂检验
感官、水分、干物质（固形物）、pH、透光率、溶解度、糊精、IG2+P+IG：、IMO含量。6.5型式检验
6.5.1除出厂检验项目外，还包括硫酸灰分、碑、铅、菌落总数、大肠菌群和致病菌。6.5.2一般情况下，形式检验需每季度进行一次。在下列情况之一时，亦需进行。a）更改主要原辅材料；
b）更改关键工艺和设备；
c）新试制的产品或正常生产的产品停产3个月以上重新恢复生产时，d）国家质量监督机构进行抽检时。6.6判定规则
6.6.1检验结果如有感官或1~2项理化指标不合格时，可以从该批产品中加倍量抽样，对不合格项目进行复检，复检结果只要有一项不合格，则该批产品为不合格。6.6.2卫生指标有项不合格，则判该批产品为不合格，不得复测。7标志、包装、运输和贮存
7.1直接食用的产品标签必须符合GB7718规定。7.2包装储运图示标志应符合GB191的规定。容器外须注有产品名称、制造厂名、厂址、净含量、批号、生产日期、保质期、执行标准号及质量等级。7.3包装物和容器必须整洁、卫生，无破损，并符合《中华人民共和国食品卫生法》的有关规定。7.4运输过程中，须防尘、防蝇，严防爆晒、雨淋，严禁与有毒、有害物质混装混运。应有防止曝晒、雨淋措施。运输中装卸，应符合外包装上包装储运图示的规定。7.5成品应贮于干燥、通风、清洁的库房中，并掌握先进先出的原则。7.6产品保质期：糖浆一、四季度不少于6个月，二、三季度不少于3个月，糖粉不少于6个月。213
A1定义
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附录A
（摄示的附录）
葡药糖转苷酶活力的定义与测定1mL液体酶，于40C+PH=5.0条件下，1h分解α-基-D-葡药糖苷产生1葡药糖为个酶活力单位，以u/mL表示。
A2试验方法
A2.1，方法提要
葡药糖转苷酵作用于底物α-甲基-D-葡药糖苷生成-葡药糖和甲醇。D-葡药糖的含量可通过含有葡萄糖氧化酶、过氧化物酶的4-氨基安替比林和苯酚试剂进行显色反应来测定。α-甲基-D-葡萄糖苷.葡葡糖转查感,D-葡萄糖+甲醇葡糖糖氨化粥,葡萄糖酸+H,02
D-葡药糖-
过氧化物酶=苯醒
H,O4-氨基安替比林萍酚
A2.2仪器
A2.2.1烘箱：控精度±2℃；
A2.2.2溢水浴，精度0.1℃
A2.2.3分光光度计：波长360~800mm，A2.2.4试管:Φ15mmX150mm。
A2.3试剂
A2.3.1无水葡翻糖，分析纯；
A2.3.220g/Lα甲基-D-葡翡糖苷溶液：称取2gα-甲基-D-葡药糖苷溶液称准至0.1g，加水溶解，并定容至100mL。手冰箱中（515℃C）置2周后使用；A2.3.34g/L4-氨基安替比林溶液：称取0.2g4-氨基安替比林，先加水10~20mL溶解，再用水定容至50mL
A2.3.42mol/L裁酸溶液：按GB601配制；A2.3.51mol/L氮氧化钠溶液：按GB601配制A2.3.6Tris-磷酸缓冲液（pH=7.2)：称取36.3g2-氨基-2-羟甲基-1,3-丙二醇LNH,C(CH2OH)，J和50.0g磷酸二氢钠（NaHzPO4·2H2O)于烧杯甲，加水约900mL便之溶解，用2mol/L盐酸溶液调pH到7.2（若加过量时，再用1mol/LNaOH溶液调回），将此溶液移人1000mL容量瓶中，用水定容：A2.3.750g/L苯酚溶液：称取5g苯酚于烧杯中，称准至0.01g，加50mL水，加热溶解，冷却至室激，移人100rL容量瓶中，用水定容；A2.3.84-氨基安替比林溶液-萃酚显色液：分别称取葡萄糖载化酶和过氧化物麟各12.5mg于烧杯中，加入约40mL Tris-磷酸缓冲液(pH=7.2)，使之溶解，再加入1mL 4-氮基安替比林溶液（A2.3.3)和1，4mL苯酚溶液（A2.3.7），将此溶液移人50mL容量瓶中，用Tris-磷酸缓冲液定容A2.3.9乙酸-乙酸钠缓冲溶液(pH=5.0):按GB/T603配制。A2.4分析步骤
A2.4.1试样的制备
吸联1mL葡糖转苷，用水定容至500mL。214
A2.4.2标准曲线的制备
QB/T 2491-
—2000
A2.4.2.1称取于105C士2C烘干至恒重的无水葡葡糖1g，称准至0.0001g，加水溶解，定容至100ml。分别吸取此溶液1.0、2.0.3.0.4.0.5.0mL，定容至100mL，此溶液相当手含0.1.0.2,0.3.0.4和 0. 5起/L的葡葡糖溶液。
A2.4.2.2取上述葡葡糖溶液各0.1ml于5个试管中，加入3mL.4-数基安替比林溶液-苯酚显色液（A2.3.8），充分播勾后，于40C±0.5℃的温水浴中精确保温20mir后取出，立即冷却至室温。以水做对照，在波长500nm下测定其吸光度（Am10、As20~A30~Aa40As50）。同时，以水代替葡糖溶液做空白试验，测定其吸光度（A）A2.5分析结巢的表述
吸光度差为1.000时，由葡药糖标准曲线求得的葡药糖微按式（A1）计算：20
A0-Ago
A30~Ag。
A.40-As0 A50-A0
（A1）
式中：G—吸光度差为1.000时，由葡萄糖标准曲线求得的药糖量，μgAs10、Am20~As30、A40、A50~葡葡糖溶液浓度分别为0.1g/L、0.2g/L、0.3g/L、0.4g/L和0.5g/L时的吸光度；
A2.6试样的测定
空白溶液的吸光度。
A2.6.1在试管中加人1mL-甲基-D-葡葡糖苷浴液和1mL乙酸-乙酸钠缓冲溶液（A2.3.9），置于40℃0.5℃的恒温水浴中，放置1015mim，然后，加人0.5mL试样溶液（A2.4.1），充分摇匀，再置于40℃0.5C的温水浴中，精确放置60mn。然后，移至沸水浴中准确加热5min，在流水中冲冷。A2.6.2取上述反应液0.1mL于试管中，按A2.4、2同样操作，测定其极光度（A）。A2.6.3空白测定：
在的试管中加人1ml.乙酸-乙酸钠缓冲溶液（A2.3.9）和0.5ml试样溶液，在沸水浴中精确加热5min后，在流水中冷却。再加人1mL&甲基-D-葡糖苷溶液，然后按A2.4.2同样操作，测定其吸光度(A.)
A2.6.4分析结果的表述：
葡葡糖转苷酶活力按式(A2)测定：2.5
X -(A-A)XGX
=(A,-A)XGX50Xn
式中：X-葡药糖转者酶活力，u/mL;A.样品反应液的吸光度；
A.-空白液的吸光度；
2.5-技应系统的体积，m.，
0.1—反应液的取样量,mL
一样品的稀群倍数。
所得的结巢保留至整数。
（A2)
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