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HG 3618-1999

基本信息

标准号: HG 3618-1999

中文名称:苏云金杆菌悬浮剂

标准类别:化工行业标准(HG)

标准状态:现行

出版语种:简体中文

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相关标签: 苏云金 杆菌 悬浮剂

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出版信息

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标准简介

HG 3618-1999.Bacillus thuringiensis suspension concentrate.
1范围
HG 3618规定了苏云金杆菌悬浮剂的要求、试验方法以及标志、标签、包装、贮运。
HG 3618适用于由苏云金杆菌原药和助剂制成的苏云金杆菌悬浮剂,主要用于防治鳞翅目害虫。
2.引用标准
下列标准所包含的条文,通过在本标准中引用而构成为本标准的条文。本标准出版时,所有版本均为有效。所有标准都会被修订,使用本标准的各方应探讨使用下列标准最新版本的可能性。
GB/T 1250-1989极限数值的表示方法和判定方法
GB/T 1601-1993农药pH值的测定方法
GB/T 1604-1995商品农药验收规则
GB/T 1605-1979(1989)商品农药采样方法
GB 3796- 1983农药包装通则
GB/T 14825-1993农药可湿性粉剂悬浮率测定方法
GB/T 16150-1995农药粉剂、 可湿性粉剂细度测定方法
HG 3617-1999苏云金杆菌原粉
3要求
3.1外观:棕黄色至褐色悬浮液体。
3.2苏云金杆菌悬浮剂还应符合表1要求。
4试验方法
除另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,所述溶液均为水溶液。
4.1抽样
按照GB/T 1605-1979(1989)中第四章“乳剂和液体状态的采样”进行,用随机数表法确定抽样的包装件数,最终抽样量应不少于250mL。
4.2鉴别试验
当用生物测定法检测产品质量产生疑问时,可用以下方法进行鉴定。
用十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)方法测定有效毒素蛋白的相对分子质量是否为130000,并同时测定毒素蛋白含量是否符合3.2指标的规定。
4.3毒素蛋白含量的测定
毒素蛋白含量可以用SDS-PAGE-扫描法和SDS-PAGE-洗脱比色法两种方法进行测定,二者精密度、准确度接近,前者由于自动化程度更高,而定为仲裁法。

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标准内容

HG3618—1999
本标准是根据我国以往制定的苏云金杆菌企业标准等有关材料,结合我国实际情况而制定的本标准对苏云金杆菌悬浮剂的要求、试验方法、抽样以及包装、运输等作了具体要求和规定,从而为苏云金杆菌的生产提供了统一的技术依据。本标准由中华人民共和国原化学工业部技术监督司提出。本标准由化学工业部沈阳化工研究院归口。本标准主要起草单位:中国农业大学应用化学系。本标准参加起草单位:湖北省生物农药工程研究开发中心、济南科贝尔生物工程有限公司。本标准主要起草人:刘丰茂、王开梅、钱传范、钟连胜、赵欣昕、王绮文。1172
中华人民共和国化工行业标准
苏云金杆菌悬浮剂
Bacillus thuringiensis suspension concentrateHG 3618--1999
苏云金杆菌(Bacillus thuringiensis,B.t.)是目前应用最广泛的一种微生物杀虫剂,它的主要杀虫成分是伴孢晶体中的毒素蛋白,其中,对鳞翅目有毒力的蛋白相对分子质量为130000。1范围
本标准规定了苏云金杆菌悬浮剂的要求、试验方法以及标志、标签、包装、贮运。本标准适用于由苏云金杆菌原药和助剂制成的苏云金杆菌悬浮剂,主要用于防治鳞翅目害虫。2引用标准
下列标准所包含的条文,通过在本标准中引用而构成为本标准的条文。本标准出版时,所有版本均为有效。所有标准都会被修订,使用本标准的各方应探讨使用下列标准最新版本的可能性。GB/T1250—1989极限数值的表示方法和判定方法GB/T1601—1993农药pH值的测定方法GB/T1604-—1995商品农药验收规则GB/T1605—1979(1989)商品农药采样方法GB3796—1983农药包装通则
GB/T148251993农药可湿性粉剂悬浮率测定方法GB/T16150—1995农药粉剂、可湿性粉剂细度测定方法HG3617—1999苏云金杆菌原粉
3要求
3.1外观:棕黄色至褐色悬浮液体。3.2苏云金杆菌悬浮剂还应符合表1要求。表1苏云金杆菌悬浮剂控制项目指标项
毒素蛋白,%
毒力效价([Px IU /μLJ[Ha IU/μLJ)pH值范围
细度(150 μm),%
悬浮率(有效成分),%
8 000 IU/μL
4 000IU/μL
注: Px 和 Ha 分别为小莱蛾(Plutella xylostella)和棉铃虫(Heliothis armigera)的缩写。国家石油和化学工业局1999-06-16批准2 000IU/μL
2000-06-01实施
4试验方法
HG 3618-1999
除另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,所述溶液均为水溶液。4.1抽样
按照GB/T1605-1979(1989)中第四章“乳剂和液体状态的采样”进行,用随机数表法确定抽样的包装件数,最终抽样量应不少于250mL。4.2鉴别试验
当用生物测定法检测产品质量产生疑问时,可用以下方法进行鉴定。用十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)方法测定有效毒素蛋白的相对分子质量是否为130000,并同时测定毒素蛋白含量是否符合3.2指标的规定。4.3毒素蛋白含量的测定
毒素蛋白含量可以用SDS-PAGE-扫描法和SDS-PAGE-洗脱比色法两种方法进行测定,二者精密度、准确度接近,前者由于自动化程度更高,而定为仲裁法。4.3.1SDS-PAGE-扫描法(仲裁法)4.3.1.1方法提要下载标准就来标准下载网
用碱性溶液处理苏云金杆菌悬浮剂伴孢晶体,使其降解为毒素蛋白,然后通过SDS-PAGE,依蛋白质相对分子质量的差异,使毒素蛋白与其他杂蛋白分离,之后用薄层扫描仪或电泳图像扫描仪扫描蛋白区带面积,进行定量。
4.3.1.2仪器、设备
电泳仪。
夹芯式垂直电泳槽(1.5mm凹形带槽橡胶模框)、凝胶板面积145mm×100mm(1.5mm、12孔样品槽模具)。
高速薄层层析扫描仪或电泳图像扫描仪。离心机:10000r/min。
分析天平:精确至0.0001g。
4.3.1.3试剂和溶液
过硫酸铵(AP)。
十二烷基硫酸钠(SDS)。
四甲基乙二胺(TEMED)。
氢氧化钠。
30%丙烯酰胺:称取丙烯酰胺30g,亚甲基双丙烯酰胺(原称:甲叉双丙烯酰胺)0.8g,溶于100mL蒸馏水中,过滤,于4℃暗处贮存备用。1 mol/L、pH8.8 三羟基甲基氨基甲烷-HCl缓冲液:称取三羟基甲基氨基甲烷 30.25 g溶于蒸馏水中,用浓盐酸调至pH8.8,用蒸罐水定容至250mL。1 mol/L、pH6.8三羟基甲基氨基甲烷-HCl 缓冲液:称取三羟基甲基氨基甲烷12.10 g溶于蒸水中,用浓盐酸调至pH6.8,用蒸馏水定容至100mL。电极缓冲液:称取三羟基甲基氨基甲烷3.03g,甘氨酸14.42g,十二烷基硫酸钠1g,用蒸馏水溶解并定容至1000mL。
3×样品稀释液:1mol/L、pH6.8三羟基甲基氨基甲烷-HCl18.75mL,十二烷基硫酸钠6g,甘油30mL,巯基乙醇15mL,少许溴酚蓝,用蒸馏水定容至100mL。染色液:称取考马斯亮蓝(CBB)R-2501g,加人甲醇450mL,冰乙酸100mL,蒸馏水450mL,溶解过滤后使用。
脱色液:量取甲醇100mL,冰乙酸35mL,用蒸馏水定容至1000mL。1174
HG 3618-- 1999
漂洗液:量取无水乙醇30mL,冰乙酸10mL,蒸馏水60mL,混合均勾后使用。毒素蛋白标样:毒素蛋白(相对分子质量为130000)含量为9.3%的原粉。4.3.1.4试样处理
称取标样20mg(准确至0.1mg),移至5mL离心管中,加2mL水充分悬浮。量取待测试样10mL,准确称量后,用蒸馏水定容至100mL,充分摇匀后取2mL稀释液,移至5 mL离心管中。
在上述2ml.试样溶液中加入0.55mol/L氢氧化钠溶液0.45mL(使氢氧化钠溶液的终浓度为0.1mol/L),放置约5min,再加人3×样品稀释液1.30mL,使最终体积为3.75mL,于100℃沸蒸馏水中煮6min,离心(2000r/min)10min后取上层清液,以备电泳上样。4.3.1.5SDS-PAGE分离毒素蛋白
a)制备8%~10%聚丙烯酰胺凝胶
采用不连续缓冲系统,制胶方法见HG3616一1999附录A(提示的附录)。b)上样
取上述标样溶液上层清液,于聚丙烯酰胺凝胶的上样孔中分别上样6.8、10、12、14μL(毒索蛋白含量约为3~7μg),作为标准曲线,再取一定体积的试样溶液上层清液(毒素蛋白含量约为5 μg),加人到上样孔中,注入电极缓冲液后,接通电源。c)电泳
电泳初期电压控制在100V左右,待试样进人分离胶后,加大电压到120V,继续电泳,当指示剂前沿到达距底端1 cm左右时停止电泳,取出胶板,在7.5%(体积百分数)的乙酸中浸泡30min。d)染色
将分离胶部分取下,用考马斯亮蓝(CBB)R-250染色液染色过夜。e)脱色
倒去染色液,先用漂洗液洗涤凝胶,然后加入脱色液,于37℃下加热使其脱色,更换几次脱色液,直至背景清晰为止。
4.3.1.6测定
胶板经脱色后,可清晰地看到130000蛋白区带,用高速薄层层析扫描仪或电泳图像扫描仪扫描该区带,扫描波长为600nm。
样品中毒素蛋白的百分含量(X)按式(1)进行计算。X=mV
式中:ml—从标准曲线上查得的样品中毒素蛋白的量,μg;m22 mL稀释液中样品的质量,mg;V,--样品最终定容体积,mL(3.75mL);V2——注人凝胶上样孔的样品体积,uL。4.3.1.7允许差
取其算术平均值为测定结果。两次平行测定结果相对偏差小于等于8%。4.3.2SDS-PAGE-洗脱比色法
4.3.2.1方法提要
+*(1)
用碱性溶液处理苏云金杆菌悬浮剂伴孢晶体,使其降解为毒素蛋白,然后通过SDS-PAGE,依蛋白质相对分子质量的差异,使毒素蛋白与其他杂蛋白分离,再割胶,洗脱,测定吸光度。4.3.2.2仪器
分光光度计。
其他同4.3.1.2。
4.3.2.3试剂和溶液
吡啶。
其他同4.3.1.3。
4.3.2.4试样处理
同4.3.1.4。
4.3.2.5SDS-PAGE分离毒素蛋白
a)制备8%~10%聚丙烯酰胺凝胶
同4.3.1.5a)。
b)上样
HG 3618—1999
取上述标样溶液上层清液,于上样孔中分别上样15、20、30、40、50μL(毒素蛋白含量约为7.5~25ug),作为标准曲线,再取一定体积的试样溶液上层清液(毒素蛋白含量约为15μg),加人到上样孔中,注人电极缓冲液后,接通电源。c)电泳
同4.3.1.5c)。
d)染色
同4.3.1.5d)。
e)脱色
同4.3.1.5e)。
4.3.2.6测定
用手术刀刮下待测区带,放于玻璃试管中,再加25%吡啶(体积百分数)3.0mL,于37℃下振荡洗脱毒素蛋白所吸附的考马斯亮蓝(CBB)R-250,平衡后用分光光度计,以25%吡啶为参比,于605nm下,测定溶液的吸光度,用式(1)计算毒素蛋白含量。4.3.2.7允许差
取其算术平均值为测定结果。两次平行测定结果相对偏差小于等于8%。4.4毒力效价的测定
按 HG 3616—1999附录 B(标准的附录)进行。4.5pH值的测定
按GB/T1601进行。
4.6悬浮率测定
4.6.1测定步骤
样品播匀后取5.00mL(精确到0.01mL),于100mL三角玻璃瓶中,加入标准硬水100mL,用手左右振荡50次。制得的悬浮液全部转移到250mL具塞量简中,用标准硬水稀释到250mL。按GB/T14825—1993中3.1进行。
4.6.2计算
悬浮率(Y)按式(2)进行计算:
Y = 111.1(C - Q)
式中:C—-配置悬浮液所取试样的毒力效价,IU;Q——留在量简底部的25mL恶浮液的毒力效价,IU。4.6.3允许差
二次重复测定结果之差不得超过10%。4.7细度的测定
吸20.00mL试样(准确至0.01mL),按GB/T16150-1995中2.2进行。1176
(2)
5检验规则
HG3618-1999
应符合GB/T1604有关规定。极限数值按GB/T1250处理。6标志、标签、包装、贮运
6.1产品包装应符合GB3796规定,并应注明所用标准编号。6.2悬浮剂产品主要采用1L塑料壶包装,壶有内外盖,不泄漏。6.3贮存时严防日晒,勿受压,置于阴凉于燥处。6.4运输时,注意轻放,防止损坏。6.5保证期:在正常运条件下,悬浮剂的质量保证期从生产日期算起为一年半,本产品出厂时毒力效价且蛋白含量不低于3.2指标,年半内毒力效价与蛋白含量均不低于3.2指标的60%。1177
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