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基本信息

标准号: GB/T 38481-2020

中文名称:微生物超低频突变测定 双重测序法

标准类别:国家标准(GB)

英文名称:Determination of ultralow-frequency mutations for microorganisms—Duplex sequencing

标准状态:现行

发布日期:2020-11-19

实施日期:2020-11-19

出版语种:简体中文

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相关标签: 微生物 低频 突变 测定 双重 测序

标准分类号

标准ICS号: 数学、自然科学>>07.080生物学、植物学、动物学

中标分类号:综合>>基础标准>>A21环境条件与通用试验方法

关联标准

出版信息

出版社:中国标准出版社

页数:8页

标准价格:24.0

相关单位信息

起草人:张翀、邢新会、李梅、剪兴金、王立言、郭肖杰、张乐乐、彭海、马爱进

起草单位:清华大学、洛阳华清天木生物科技有限公司、江汉大学、中国标准化研究院

提出单位:中国标准化研究院

发布部门:国家市场监督管理总局 国家标准化管理委员会

标准简介

GB/T 38481-2020.Determination of ultralow-frequency mutations for microorganisms-Duplex sequencing.
1范围
GB/T 38481规定了用双重测序法测定微生物超低频突变的方法。
GB/T 38481适用于微生物基因组或基因片段超低频突变的测定。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T 6682分析实验室用水规格和试验方法
3术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
3.1
超低频突变 ultralow-frequency mutations
化学、物理或生物因素导致微生物DNA发生的频率低于1X 10-的永久性改变。
3.2
条形码标签 barcode label
接在待测DNA片段两侧的核苷酸片段,用以标示同一扩增家族的DNA.协助进行突变位点的确认。
3.3
互补标签家族 complementary tag family
所有含两端互补条形码标签的DNA片段。
3.4
双链同源序列 double-strand consensus sequences;DCSs
带有相同条形码标签的双链DNA序列,包含反向互补链。
4原理
在待测DNA片段两端接上一段12 nt随机且互补的双链核苷酸条形码标签,然后对所有带有条形码标签的序列进行双重的高通量测序。利用12 nt随机互补标签,排除掉测序文库制备过程中所引入的突变,进而准确检测突变位点和突变率。
5试剂
除非另有规定,仅使用分析纯试剂。
5.1 水。GB/T 6682,一级。
本标准规定了用双重测序法测定微生物超低频突变的方法。 本标准适用于微生物基因组或基因片段超低频突变的测定。


标准内容

中华人民共和国国家标准 GB/T38481—2020 微生物超低频突变测定 双重测序法 Determination of ultralow-frequency mutations for microorganisms-Duplex sequencing 发布日期:2020-11-19 实施日期:2020-11-19 1 范围 本标准规定了用双重测序法测定微生物超低频突变的方法,适用于微生物基因组或基因片段的超低频突变测定。 2 规范性引用文件 GB/T6682 分析实验室用水规格和试验方法 3 术语和定义 3.1 超低频突变 ultralow-frequency mutations:化学、物理或生物因素导致微生物DNA发生频率低于1×10^-5的永久性改变。 3.2 条形码标签 barcode label:接在待测DNA片段两侧的核苷酸片段,用以标示同一扩增家族的DNA,协助确认突变位点。 3.3 互补标签家族 complementary tag family:所有含两端互补条形码标签的DNA片段。 3.4 双链同源序列 double-strand consensus sequences (DCSs):带有相同条形码标签的双链DNA序列,包含反向互补链。 4 原理 在待测DNA片段两端接上一段12nt随机且互补的双链核苷酸条形码标签,然后对所有带有条形码标签的序列进行双重高通量测序。利用12nt随机互补标签,可排除测序文库制备过程中引入的突变,准确检测突变位点和突变率。 5 试剂 除非另有规定,仅使用分析纯试剂。 5.1 水:GB/T6682,一级水。 5.2 接头链标签序列:a)5'-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-3';b)5'-TCTTCTACAGTCANNNNNNNNNNNNAGATCGGAAGAGCACACGTCTGAACTCCAGTCAC-3'。N为A、T、C或G,由12个随机碱基组成。溶解于Tris-EDTA缓冲液或纯水中至终浓度100 μmol/L,置于-20℃保存。 5.3 接头链扩增引物序列:a)5'-AATGATACGGCGACCACCGAG-3';b)5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATXXXXXXGTGACTGGAGTTCAGACGTGTGC-3'。X为按样品设计的文库标记序列。溶解于Tris-EDTA缓冲液或纯水中至终浓度20 μmol/L,置于-20℃保存。 5.4 基因提取试剂盒 5.5 高通量测序建库试剂盒 5.6 DNA分选磁珠试剂盒 5.7 DNA分析试剂盒 5.8 三羟甲基氨基甲烷-乙二胺四乙酸(Tris-EDTA)缓冲液,pH 8.0,由10 mmol/L分析纯Tris和0.1 mmol/L EDTA配制。 6 仪器设备及器具 6.1 PCR扩增仪 6.2 磁性分离器 6.3 高通量测序仪 6.4 核酸分析系统 6.5 电子天平,精度0.01 g 7 样品制备 7.1 DNA提取:利用微生物基因组或质粒提取试剂盒提取DNA,使用50 μL无菌双蒸水洗脱。提取DNA样品用核酸定量仪测定浓度和纯度。 7.2 DNA片段化和末端修复:利用高通量建库试剂盒,将DNA片段化至100~1000 bp,并末端修复为A尾。 8 接头条形码标签的合成 8.1 退火:将浓度100 μmol/L的两个接头链寡核苷酸各取100 μL,95℃加热5 min后自然降温,静置1 h。 8.2 延伸:将8.1产物按试剂说明与dNTPs和聚合酶混合进行延伸反应。

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