首页 >  江苏省地方标准  > DB32/T 3686-2019山羊副流感病毒3型检测技术规程

基本信息

标准号: DB32/T 3686-2019

中文名称:山羊副流感病毒3型检测技术规程

所属省份:江苏省地方标准(DB32)

标准状态:现行

发布日期:2019-12-03

实施日期:2019-12-25

出版语种:简体中文

下载格式:.pdf .zip

下载大小:227.72 KB

标准分类号

标准ICS号:65.020.30

中标分类号:B40

出版信息

页数:12 页

相关单位信息

起草人:李文良、毛立、李基棕、郝飞、刘茂军、杨蕾蕾、孙敏

起草单位:江苏省农业科学院

归口单位:江苏省农业科学院

提出单位:江苏省农业科学院

发布部门:江苏省市场监督管理局

标准简介

本标准规定了山羊副流感病毒3型(Caprine paraifluenza virus 3,CPIV3)的病原学检测(病毒核酸的RTPCR和荧光定量RTPCR检测)、血清学检测[血凝抑制(HI)试验]的技术要求。本标准适用于山羊副流感病毒3型及其感染情况的实验室检测。

引用标准:GB/T 6682    GB 19489    NY/T 541。
本文档为江苏省地方标准DB32/T 3686-2019《山羊副流感病毒3型检测技术规程》。详细规定了山羊副流感病毒3型(CPIV-3)的病原学检测方法(包括常规RT-PCR和荧光定量RT-PCR)及血清学检测方法(血凝抑制HI试验)。涵盖了材料准备、仪器设备、样品处理、反应体系、扩增程序及结果判定标准,并提供了引物序列和探针信息。适用于山羊副流感病毒3型及其感染情况的实验室检测。

部分标准内容

ICS 65.020.30
B 40

江苏省地方标准

DB32/T 3686-2019

山羊副流感病毒3型检测技术规程
Technical regulations for detection of Caprine parainfluenza virus 3

2019-12-04 发布
2019-12-25 实施

江苏省市场监督管理局 发布


前言

本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。本标准由江苏省农业科学院提出并归口。本标准起草单位:江苏省农业科学院。
本标准主要起草人:李文良、毛立、李基棕、郝飞、刘茂军、杨蕾蕾、孙敏。


1 范围

本标准规定了山羊副流感病毒3型(Caprine parainfluenza virus 3,CPIV-3)的病原学检测(病毒核酸的RT-PCR和荧光定量RT-PCR检测)、血清学检测(血凝抑制(HI)试验)的技术要求。
本标准适用于山羊副流感病毒3型及其感染情况的实验室检测。


2 规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法
GB 19489 实验室生物安全通用要求
NY/T 541 兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范


3 病原学检测

3.1 材料
微量移液器及吸头、DEPC水处理的离心管、吸头、PCR扩增管、TRIzol试剂、三氯甲烷、异丙醇、DEPC处理水(用水符合GB/T 6682规定)、反转录酶/Taq DNA聚合酶混合液、2×一步法RT-PCR反应缓冲液、一步法荧光定量RT-PCR试剂盒、TAE缓冲液、琼脂糖、核酸染料、引物MF/MR、引物qMF/qMR与探针(附录A)。

3.2 仪器设备
PCR仪、荧光定量PCR仪、台式冷冻离心机、电泳仪和水平电泳槽、凝胶成像仪(或紫外透射仪)。

3.3 反转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)

3.3.1 样品处理与RNA的提取
采集羊的鼻拭子、气管拭子或肺脏(样品的采集、保存和运输应符合NY/T 541相关规定)。取200 μL待检样品液至无菌无RNA酶的EP管中,使用TRIzol试剂、RNA提取试剂盒或自动化核酸提取仪等方法提取RNA。

3.3.2 RT-PCR反应
RT-PCR反应使用20 μL体系:10 μL 2×一步法RT-PCR反应缓冲液、引物MF/MR各0.5 μL(10 μmol/L)、0.4 μL反转录酶/Taq DNA聚合酶混合液、4 μL RNA模板,4.6 μL DEPC处理水。反应条件为:45 ℃反转录30 min;94 ℃预变性2 min;94 ℃ 30 s,54 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,进行35个循环;72 ℃延伸10 min。

3.3.3 结果判定
取PCR产物10 μL,在1.2%琼脂糖凝胶中进行电泳,在凝胶成像系统中观察结果。样品PCR检测产物电泳后有大小为346 bp的片段判断为山羊副流感病毒3型核酸阳性,无条带判断为阴性。每次试验应设置阴阳性对照,阴阳性对照应不出现或出现相应大小的条带。

3.4 荧光定量反转录-聚合酶链式反应(荧光定量RT-PCR)

3.4.1 核酸提取与荧光定量RT-PCR反应
核酸提取同3.3.1。荧光定量RT-PCR反应使用20 μL体系:10 μL 2×一步法反应缓冲液,0.4 μL反转录酶,0.4 μL DNA聚合酶,引物qMF/qMR各0.4 μL(10 μmol/L),0.8 μL探针,0.4 μL染料,2 μL RNA模板,5.2 μL DEPC处理水。将PCR管置于荧光定量PCR仪器上进行RT-PCR扩增,程序如下:42 ℃ 5 min;95 ℃ 10 s;95 ℃ 5 s,60 ℃ 34 s,共进行40个循环。

3.4.2 荧光定量RT-PCR结果判定
阳性对照扩增曲线呈标准的S曲线,且Ct值<30。阴性对照扩增曲线应为基线下的水平线。若样本曲线呈S形曲线,且Ct值<38为阳性;未出现扩增曲线为阴性。


4 血清学检测

血凝抑制(HI)试验

4.1 材料
微量移液器及配套吸头、96孔V型微量反应板、生理盐水、1%豚鼠红细胞悬液(配制方法见附录B)、病毒液(相关试验操作应符合GB 19489的要求)、标准阳性血清、标准阴性血清。

4.2 仪器设备
离心机、恒温培养箱。

4.3 病毒血凝效价测定
每次HI试验前应对病毒血凝效价进行测定,检测与判定方法如下:
a) 在反应板一排各孔中加25 μL生理盐水;
b) 第一孔中加25 μL病毒分离液,按照1:2倍比稀释,最后一孔不加抗原作阴性对照。每孔中再加25 μL PBS;
c) 每孔加25 μL 1%豚鼠红细胞液,37 ℃孵育40 min;
d) 判定:当红细胞被凝集时,红细胞均匀分布在反应板底部,反应板倾斜片刻,红细胞不下滑;红细胞未被凝集时,反应板倾斜片刻,可见沉淀的红细胞向下滑动,形成流线。
HA效价为全部红细胞出现凝集时的最高稀释倍数。

4.4 HI试验
按如下方法进行HI试验:
a) 在96孔V型微量反应板各孔中加25 μL生理盐水;
b) 加25 μL经处理的血清于第一孔中,混匀后取25 μL加到第2孔中,依次倍比稀释,从第2孔加至第11孔,第11孔混匀后吸取25 μL弃去,最后1孔不加血清作为对照;
c) 每孔中加25 μL 4个HA单位的病毒抗原,37 ℃孵育40 min;
d) 每孔加25 μL 1%豚鼠红细胞液,37 ℃孵育40 min。

4.5 结果判定
将反应板倾斜70度左右,若无凝集反应,则沉淀的红细胞向下滑动,呈流线状,记录为抗体阳性。完全抑制凝集的抗体最高稀释倍数为血清的HI抗体滴度,抗体滴度大于等于16为阳性,小于等于8为阴性。若检测发病后双份血清(第一份血清应在临床症状出现后立即采集,第二份血清在两周后采集),抗体滴度上升4倍或4倍以上时,表明羊只近期被感染。


附录A
(资料性附录)
引物序列

A.1 引物
表A.1 用于RT-PCR和荧光定量RT-PCR检测的引物、探针

靶基因:M基因
引物名称:MF
序列(5'-3'):AGTGATCTAGATGATGATCCA

靶基因:M基因
引物名称:MR
序列(5'-3'):GTTATTGATCCAATTGCTGT

靶基因:M基因
引物名称:qMF
序列(5'-3'):GCTTGGCTTCTTTGAAATGG

靶基因:M基因
引物名称:qMR
序列(5'-3'):GCCTGCAGAAGTTCCTTGTC

靶基因:M基因
探针名称:CPIV3Probe
序列(5'-3'):FAM-CAATCGGACTAGCCAAGTATGGTGGGA-TAMRA

注:引物MF、MR产物大小为346 bp;引物qMF、qMR产物大小为150 bp。

A.2 引物的溶解
引物MF、MR、qMF、qMR用灭菌的DEPC处理水溶解到浓度为10 μmol/L;CPIV3Probe用灭菌的DEPC处理水溶解到浓度为10 μmol/L。

小提示:此标准内容仅展示完整标准里的部分截取内容,若需要完整标准请到上方自行免费下载完整标准文档。

📥 下载资源 免费下载解压密码 www.bzxz.net
🌀 夸克网盘 下载大小:227.72 KB · zip
前往下载 →
💡 点击"前往下载"跳转网盘,直接保存文件 遇到问题?

标准图片预览

DB32/T 3686-2019山羊副流感病毒3型检测技术规程 DB32/T 3686-2019山羊副流感病毒3型检测技术规程 DB32/T 3686-2019山羊副流感病毒3型检测技术规程 DB32/T 3686-2019山羊副流感病毒3型检测技术规程 DB32/T 3686-2019山羊副流感病毒3型检测技术规程