GBZ/T 240.9-2011
基本信息
标准号： GBZ/T 240.9-2011
中文名称：化学品毒理学评价程序和试验方法 第9部分：体外哺乳动物细胞染色体畸变试验
标准类别：国家标准(GB)
标准状态：现行
出版语种：简体中文
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相关标签： 化学品 评价 程序 试验 方法 体外 哺乳动物 细胞 染色体 畸变
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标准简介
GBZ/T 240.9-2011 化学品毒理学评价程序和试验方法 第9部分：体外哺乳动物细胞染色体畸变试验
GBZ/T240.9-2011
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标准内容
ICS13.100
中华人民共和国国家职业卫生标准GBZ/T240.9—2011
化学品毒理学评价程序和试验方法第9部分：体外哺乳动物细胞
染色体畸变试验
Procedures and tests for toxicological evaluations of chemicals-Part 9:In vitro mammalian chromosome aberration test2011-08-19发布
2012-03-01实施
中华人民共和国卫生部发布
根据《中华人民共利国职业病防治法》制定本部分GBZ/T240《化学品毒理学评价程序和试验方法》现分为以下四十四部分：第1部分：总则；
第2部分：急性经口毒性试验；
第3部分：急性经皮毒性试验；
第4部分：急性吸人毒性试验；
第5部分：急性眼刺激性/腐蚀性试验；第6部分：急性皮肤刺激性/腐蚀性试验；第7部分：皮肤致敏试验；
第8部分：鼠伤寒沙门氏菌回复突变试验；第9部分：体外哺乳动物细胞染色体畸崎变试验；第10部分：休外哺乳动物细胞基因突变试验；第11部分：休内哺乳动物骨髓嗜多染红细胞微核试验第12部分：体内哺乳动物骨髓细胞染色体畸变试验；第13部分：哺乳动物精原细胞/初级精母细胞染色体畸变试验；第14部分：啮齿类动物显性致死试验；第15部分：亚急性经口毒性试验；第16部分：亚急性经皮毒性试验；第17部分：亚急性吸人毒性试验；第18部分：业慢性经口毒性试验；第19部分：亚慢性经皮毒性试验；第20部分：亚慢性吸人声性试验；第21部分：致畸试验；
第22部分：两代繁殖毒性试验；第23部分：迟发性神经毒性试验；第24部分：慢性经口毒性试验；第25部分：慢性经皮毒性试验；第26部分：慢性吸人毒性试验；第27部分：致癌试验；
第28部分：慢性毒性/致癌性联合试验；第29部分：毒物代谢动力学试验：第30部分：皮肤变态反应试验-局部淋巴结法；第31部分：大肠杆菌回复突变试验；第32部分：酵母菌基因突变试验第33部分：果蝇伴性隐性致死试验；第34部分：枯草杆菌基因重组试验；第35部分：体外哺乳动物细胞程序外DNA合成（UDS）试验；第36部分：体内哺乳动物外周血细胞微核试验；GBZ/T240.9—2011
GBZ/T240.9--2011
第37部分：体外哺乳动物细胞娣妹染色单体交换试验：第38部分：体内哺乳动物骨髓细胞娣妹染色体交换试验：第39部分：精子畸形试验；
第40部分：繁殖/生长发育毒性筛选试验；第41部分：亚急性毒性合并繁殖/发育毒性筛选试验；第42部分：一代繁殖试验；
一第43部分：神经毒性筛选组合试验；第44部分：免疫毒性试验。
本部分为GBZ/T240的第9部分。
本部分的附录A是资料性附录。
本部分由卫生部职业卫生标准专业委员会提出本部分由中华人民共和国卫生部批准。本部分起草单位：广西职业病防治研究所、中国疾病预防控制中心职业卫生与中毒控制所。本部分主要起草人：葛宪民、孙金秀、常兵、林铮。Ⅱ
1范围
化学品毒理学评价程序和试验方法第9部分：体外哺乳动物细胞
染色体畸变试验
GBZ/T240.9—2011
GBZ/T240的本部分规定了体外哺乳动物细胞染色体畸变试验目的、试验概述、试验方法、数据处理与结果评价、评价报告和结果解释。本部分适用于检测化学品可能引起的细胞遗传学毒性。2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注口期的版本适用于木文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GBZ/T224职业卫生名词术语
GBZ/T240.1化学品毒理学评价程序和试验方法第1部分：总则
3术语和定义
GB7/T240.1界定的术语和定义适用于本文件。3.1
染色体型畸变chromosomc-typeaberration在两个染色单体的相同位点均出现断裂或断裂重组的结构改变3.2
Echromatid-typeaberration
染色单体型畸变
染色单体断裂或染色单体断裂重组的结构损伤改变。3.3
染色体数目畸变
chromosomalnumerical aberration染色体数目发生改变，不同于正带核型3.4bZxz.net
chromosomal structure aberration染色体结构畸变
通过显微镜可以直接观察到的发牛在细胞有丝分裂中期的染色体的结构变化。如染色体中间缺失和断片，染色体互换和内交换等。3.5
有丝分裂指数
mitotic index
中期相细胞数与所观察的细胞总数之比值，是一项反映细胞增殖程度的指标。4：试验目的
通过检测受试样品诱发体外培养的哺乳动物细胞染色体畸变的能力，从而评价受试样品的致突变性。GBZ/T240.9-—2011
5试验概述
在加或不加入代谢活化系统的条件下，使培养的哺乳动物细胞暴露于受试样品中。用中期分裂相阻断剂（如秋水仙素处理，使细胞停止在中期分裂相，随后收获细胞、制片、染色、分析染色体畸变6试验方法
6.1受试样品处理
受试样品一股应新鲜配制
到。如果溶液贮存稳定，可以不必新鲜配制。「固体受试样品应溶解或悬浮
于适合的溶剂中，并稀释至
定浓度。液体受试样品可直接使用或予以稀释HIN
6.2剂量水平
金测剂量，检测范围建议覆盖两个10倍稀释系列。对有细胞毒性的受试样受试样品至少应城
品，其剂量范国应包抹从最大毒性至几乎无毒性，当收获细胞时，高剂量应能明显减少细胞计数或有丝分裂指数（均应大于
%对无细胞毒性或细胞毒性很小的化合物，高剂量应达到5uL/mL.5mg/ml或0.01mo1/L。应在预式验中确定细胞毒性和溶解度。测定细胞毒性可使用指示细胞完整性和生长情况的指标，如相对集将形成率或相对细胞生长率等。应在S，系统存在或不存在的条件下测定细胞毒Q物质，当达到不溶解浓度时仍无毒性，则高剂量应采用最终培养液中溶解度限值性。对于相对不溶
以上的一个浓度
影响观察。
6.3对照组
6.3.1阳性对照
些情况下，应使用一
个以上可见沉淀的浓度，溶解性可用肉眼等别，但沉淀不能可根据受试样品的质和结构选择适宜的阳性对照物，应是已知的断裂剂能引起可检出的、并可R
重复的阳性结果。
当不存在外源性代谢活化系统时，可使用的阳性对照物有甲磺酸甲酯（
methanesulphonate),
甲硕酸乙酯（e
anesulphonate);
丝裂霉素C(mytonyoina
乙基亚硝基脲(ethyl itosourea);-4-硝基喹嘛-N-氧化物（4itroquinoline-N-oxide）等。当存在外源性活化系统时，可使用的阳性对照物有：茉并（a）（benzo(a)pyrene）；环磷酰胺（cyclophosphamide）等。6.3.2阴性对照
介质对照：介质应为非致突变物，不与受试样品发生化学反应，不影响细胞存活和S，活性。首a
选介质是水或水溶性溶剂，亦可使用二甲基亚砜（DMSO），但浓度不应大于0.5%b）空白对照：如果没有文献资料或历史资料证实所用介质无致突变作用时应设空自对照。6.4细胞株
可选用中国地鼠肺（CHL）细胞株或卵巢（CHO）细胞株、人或其他哺乳动物外周血淋巴细胞（lym2
phocyte）。般推荐使用中国地鼠肺（CIIL）细胞株。6.5试剂配制
6.5.1培养液MEM（Eagle）
GBZ/T240.9—2011
加人非必需氨基酸和抗菌素（青霉素按100IU/mL、链霉素100μg/mL），胎牛血清或小牛血清按10%加入。也可选用其他合适的培养液。6.5.2代谢活化系统
大鼠肝微粒体酶Sg，其诱导和制备方法见附录A。6.5.30.04%秋水仙素溶夜
取40 mg秋水仙菱落100mL.无菌0.85%氯化钠溶液中，过滤除离。6.5.4
0.075mol/l
氧钾溶液
固定液
甲膜：冰酸（6/1,临用前配制。6.5.6
姬姆萨染液
318g，置玛瑙乳钵中，加少量甲醇研磨取姬姆萨
逐渐加甲醇至375mL，待完全溶解后，再加℃温箱中保温。保温期间振据数次使充分案解。最出过滤，2周后使用，作125mL甘油，
为姬姆萨染液
配成其应用液
使用时，取
份姬姆萨染液原液，与9份1/15mol/L磷酸盐级冲液（pH6.8）混合：pH6.8）配制方法如下：
磷酸盐缓冲液（l/15mol/L
第一液罐酸氢二钠
第二液吸磷酸
47g溶子蒸馅水1000mL中，配成1/15no/L溶液49.07g溶于蒸馏水1000mL中，配成1/15mol/溶液二氢钾
取第一液49.c加于第二液50.5mL中混勾，即为pH6.8的1/15mol/缓冲液。ON
6.6试验步骤
6.6.1细胞培养与染毒
5的条件下进行。试验前一天，将一定数量的细胞接种于培养皿（瓶）中，试验需在加入和不加人
放CO培养箱内培养。试验时吸去培养Ⅲ（瓶）中的培养液，加人一定浓度的受试样品，S，混合液（不加S，混合液时，需用培养液补足）以及一定量不含血清的培养液，放培养箱中，根据细胞周期决定处理2h~6h。结束后，吸去含受试样品的培养液，用Hemks液洗细胞3次，加人含10%胎牛血清的培养液放回培养箱，于24h或48h内收获细胞。收获前2h4h，加人细胞分裂中期阻断剂（如用秋水仙素，作用时间为4h，终浓度为1g/mL）。如果在上述加入和不加入S，混合液的条件下均获得阴性结果，则需加做长时间处理的试验，即在没有S，混合液的条件下，使受试样品与试验系统的接触时间延长至24h。当难以得出明确结论时，应更换试验条件，如改变代谢活化条件、受试样品与试验系统接触时间等重复试验。6.6.2收获细胞与制片
6.6.2.1消化：用0.25%胰蛋白酶溶液消化细胞，待细胞脱落后，加人含10%胎牛或小牛血清的培养液终止胰蛋白酶的作用，混匀，放入离心管以1000r/min～1200r/min的速度离心5min~7min，齐去3
GBZ/T240.9-2011
上清液。
6.6.2.2低渗：加人0.075mol/LKCI溶液7mL，用滴管将细胞轻轻地混勾，放人37℃水浴中低渗处理10min~15min，加人2mL固定液（甲醇：冰醋酸3：1）混匀，以1500/min速度离心5min~7min，弃去上清液
6.6.2.3固定加入7mL固定液，混勾后固定7min，以1500/min速度离心7min，弃去上清液。用同法再固定1次～2次，弃去上清液。6.6.2.4滴片：加人数滴新鲜固定液，混勾。用混悬液滴片，白然于燥。6.6.2.5染色：用姬姆萨染液染色。6.6.3镜检
每一剂量组选择200个分散良好的中期分裂相，在显微镜油镜下进行读片。在读片时应记录每一观察细胞的染色体数月，对于畸变细胞还应记录显微镜视标位置及畸变类型。所有处理组、阳性和阴性对照组均需测定有丝分裂指数。每一剂量组应分析不少于1000个分散良好的中期分裂相。7数据处理与结果评价
7.1数据处理
结果数据的计算指标包括每个细胞染色体畸变数、染色体结构异常百分率、各剂量组及对照组不同类型染色体异常数与频率等。分裂细胞数应另计，一般不包括在总异常频率中。所得各组的染色体畸变率用x检验进行统计学处理，以评价剂量组和对照组之间是否有显著性差异。7.2结果评价
在下列两种情况下可判定受试样品在本试验系统中为阳性结果：a）受试样品引起染色体结构畸变数的增加具有统计学意义，并有与剂量相关的增加；b）受试样品在任何一个剂量条件下，引起染色体结构畸变数的增加具有统计学意义，并有可重复性。评价时应综合考虑生物学和统计学意义。8评价报告
除GBZ/T240.1规定的一般项目外，评价报告还应包括以下内容：a）所用溶剂及其配制、剂量选择（应说明受试样品的细胞毒性测定方法、溶解情况等）；细胞株名称；
试验条件和方法；
代谢活化系统所用酶诱导剂、米源及S混合液配方；培养液名称与血清类别和使用溶解情况，一阳性对照物名称和选用浓度：阴性（溶剂）对照物名称及使用浓度；一接种的细胞密度以及所用培养Ⅲ（瓶）的规格；一中期分裂阻断剂名称、所用浓度和作用时间；一受试样品与试验系统的接触时间。d）简述制片方法；
毒性特征、细胞周期资料、分裂指数、受试样品的pH值、畸变（包括裂隙分析）、各试验组（剂量组、阳性组、阴性组）染色体畸变数目及畸变类型、畸变范围、剂量-反应关系、统计处理方法、本实验室历史上的染色体畸变率范围、均值和标准差（说明样品数）；4
f）结论。
9结果解释
GBZ/T240.9—2011
阳性结果表明受试样品在该试验条件下可引起所用哺乳动物细胞染色体畸变。阴性结果表明在该试验条件下受试样品不引起所用哺乳动物动物细胞染色体畸变、GBZ/T240.9—2011
A.1诱导
附录A
（资料性附录）
大鼠肝微粒体酶的诱导和S，的制备应用最广泛的大鼠肝微粒体酶的诱导剂是多氯联苯（PCB）混合物，选择健康雄性大鼠体重200g左右，一次腹腔注射诱导剂500mg/kg。诱导剂溶于玉米油中，浓度为200mg/mL。A.2S.制备
动物诱导后第五日断头处死。处死前12h停止饮食，但可自由饮水。首先，用75%酒精消声动物皮肤，剖开腹部。在无菌条件下，取出肝脏，去除肝脏的结缔组织，用冰浴的0.15mol/L氯化钾淋洗肝脏，放人盛有0.15mol/L氯化钾溶液的烧杯里。按每克肝脏加人0.15mol/1.氟化钾溶液3mL。用电动勾浆器制成肝勾浆，再在低温高速离心机上，在4℃条件下，以9000g离心10min，取其上清液分装于塑料管中。每管装2mL~3mL。储存于液氮生物容器中或一80℃冰箱中备用。上述全部操作均在冰水浴中和无菌条件下进行。制备肝S：所用一切手术器械、器血等，均经灭菌消毒。S，制备后，其活力需经诊断性诱变剂进行鉴定。
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中华人民共和国国家职业卫生标准GBZ/T240.9—2011
化学品毒理学评价程序和试验方法第9部分：体外哺乳动物细胞
染色体畸变试验
Procedures and tests for toxicological evaluations of chemicals-Part 9:In vitro mammalian chromosome aberration test2011-08-19发布
2012-03-01实施
中华人民共和国卫生部发布
根据《中华人民共利国职业病防治法》制定本部分GBZ/T240《化学品毒理学评价程序和试验方法》现分为以下四十四部分：第1部分：总则；
第2部分：急性经口毒性试验；
第3部分：急性经皮毒性试验；
第4部分：急性吸人毒性试验；
第5部分：急性眼刺激性/腐蚀性试验；第6部分：急性皮肤刺激性/腐蚀性试验；第7部分：皮肤致敏试验；
第8部分：鼠伤寒沙门氏菌回复突变试验；第9部分：体外哺乳动物细胞染色体畸崎变试验；第10部分：休外哺乳动物细胞基因突变试验；第11部分：休内哺乳动物骨髓嗜多染红细胞微核试验第12部分：体内哺乳动物骨髓细胞染色体畸变试验；第13部分：哺乳动物精原细胞/初级精母细胞染色体畸变试验；第14部分：啮齿类动物显性致死试验；第15部分：亚急性经口毒性试验；第16部分：亚急性经皮毒性试验；第17部分：亚急性吸人毒性试验；第18部分：业慢性经口毒性试验；第19部分：亚慢性经皮毒性试验；第20部分：亚慢性吸人声性试验；第21部分：致畸试验；
第22部分：两代繁殖毒性试验；第23部分：迟发性神经毒性试验；第24部分：慢性经口毒性试验；第25部分：慢性经皮毒性试验；第26部分：慢性吸人毒性试验；第27部分：致癌试验；
第28部分：慢性毒性/致癌性联合试验；第29部分：毒物代谢动力学试验：第30部分：皮肤变态反应试验-局部淋巴结法；第31部分：大肠杆菌回复突变试验；第32部分：酵母菌基因突变试验第33部分：果蝇伴性隐性致死试验；第34部分：枯草杆菌基因重组试验；第35部分：体外哺乳动物细胞程序外DNA合成（UDS）试验；第36部分：体内哺乳动物外周血细胞微核试验；GBZ/T240.9—2011
GBZ/T240.9--2011
第37部分：体外哺乳动物细胞娣妹染色单体交换试验：第38部分：体内哺乳动物骨髓细胞娣妹染色体交换试验：第39部分：精子畸形试验；
第40部分：繁殖/生长发育毒性筛选试验；第41部分：亚急性毒性合并繁殖/发育毒性筛选试验；第42部分：一代繁殖试验；
一第43部分：神经毒性筛选组合试验；第44部分：免疫毒性试验。
本部分为GBZ/T240的第9部分。
本部分的附录A是资料性附录。
本部分由卫生部职业卫生标准专业委员会提出本部分由中华人民共和国卫生部批准。本部分起草单位：广西职业病防治研究所、中国疾病预防控制中心职业卫生与中毒控制所。本部分主要起草人：葛宪民、孙金秀、常兵、林铮。Ⅱ
1范围
化学品毒理学评价程序和试验方法第9部分：体外哺乳动物细胞
染色体畸变试验
GBZ/T240.9—2011
GBZ/T240的本部分规定了体外哺乳动物细胞染色体畸变试验目的、试验概述、试验方法、数据处理与结果评价、评价报告和结果解释。本部分适用于检测化学品可能引起的细胞遗传学毒性。2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注口期的版本适用于木文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GBZ/T224职业卫生名词术语
GBZ/T240.1化学品毒理学评价程序和试验方法第1部分：总则
3术语和定义
GB7/T240.1界定的术语和定义适用于本文件。3.1
染色体型畸变chromosomc-typeaberration在两个染色单体的相同位点均出现断裂或断裂重组的结构改变3.2
Echromatid-typeaberration
染色单体型畸变
染色单体断裂或染色单体断裂重组的结构损伤改变。3.3
染色体数目畸变
chromosomalnumerical aberration染色体数目发生改变，不同于正带核型3.4bZxz.net
chromosomal structure aberration染色体结构畸变
通过显微镜可以直接观察到的发牛在细胞有丝分裂中期的染色体的结构变化。如染色体中间缺失和断片，染色体互换和内交换等。3.5
有丝分裂指数
mitotic index
中期相细胞数与所观察的细胞总数之比值，是一项反映细胞增殖程度的指标。4：试验目的
通过检测受试样品诱发体外培养的哺乳动物细胞染色体畸变的能力，从而评价受试样品的致突变性。GBZ/T240.9-—2011
5试验概述
在加或不加入代谢活化系统的条件下，使培养的哺乳动物细胞暴露于受试样品中。用中期分裂相阻断剂（如秋水仙素处理，使细胞停止在中期分裂相，随后收获细胞、制片、染色、分析染色体畸变6试验方法
6.1受试样品处理
受试样品一股应新鲜配制
到。如果溶液贮存稳定，可以不必新鲜配制。「固体受试样品应溶解或悬浮
于适合的溶剂中，并稀释至
定浓度。液体受试样品可直接使用或予以稀释HIN
6.2剂量水平
金测剂量，检测范围建议覆盖两个10倍稀释系列。对有细胞毒性的受试样受试样品至少应城
品，其剂量范国应包抹从最大毒性至几乎无毒性，当收获细胞时，高剂量应能明显减少细胞计数或有丝分裂指数（均应大于
%对无细胞毒性或细胞毒性很小的化合物，高剂量应达到5uL/mL.5mg/ml或0.01mo1/L。应在预式验中确定细胞毒性和溶解度。测定细胞毒性可使用指示细胞完整性和生长情况的指标，如相对集将形成率或相对细胞生长率等。应在S，系统存在或不存在的条件下测定细胞毒Q物质，当达到不溶解浓度时仍无毒性，则高剂量应采用最终培养液中溶解度限值性。对于相对不溶
以上的一个浓度
影响观察。
6.3对照组
6.3.1阳性对照
些情况下，应使用一
个以上可见沉淀的浓度，溶解性可用肉眼等别，但沉淀不能可根据受试样品的质和结构选择适宜的阳性对照物，应是已知的断裂剂能引起可检出的、并可R
重复的阳性结果。
当不存在外源性代谢活化系统时，可使用的阳性对照物有甲磺酸甲酯（
methanesulphonate),
甲硕酸乙酯（e
anesulphonate);
丝裂霉素C(mytonyoina
乙基亚硝基脲(ethyl itosourea);-4-硝基喹嘛-N-氧化物（4itroquinoline-N-oxide）等。当存在外源性活化系统时，可使用的阳性对照物有：茉并（a）（benzo(a)pyrene）；环磷酰胺（cyclophosphamide）等。6.3.2阴性对照
介质对照：介质应为非致突变物，不与受试样品发生化学反应，不影响细胞存活和S，活性。首a
选介质是水或水溶性溶剂，亦可使用二甲基亚砜（DMSO），但浓度不应大于0.5%b）空白对照：如果没有文献资料或历史资料证实所用介质无致突变作用时应设空自对照。6.4细胞株
可选用中国地鼠肺（CHL）细胞株或卵巢（CHO）细胞株、人或其他哺乳动物外周血淋巴细胞（lym2
phocyte）。般推荐使用中国地鼠肺（CIIL）细胞株。6.5试剂配制
6.5.1培养液MEM（Eagle）
GBZ/T240.9—2011
加人非必需氨基酸和抗菌素（青霉素按100IU/mL、链霉素100μg/mL），胎牛血清或小牛血清按10%加入。也可选用其他合适的培养液。6.5.2代谢活化系统
大鼠肝微粒体酶Sg，其诱导和制备方法见附录A。6.5.30.04%秋水仙素溶夜
取40 mg秋水仙菱落100mL.无菌0.85%氯化钠溶液中，过滤除离。6.5.4
0.075mol/l
氧钾溶液
固定液
甲膜：冰酸（6/1,临用前配制。6.5.6
姬姆萨染液
318g，置玛瑙乳钵中，加少量甲醇研磨取姬姆萨
逐渐加甲醇至375mL，待完全溶解后，再加℃温箱中保温。保温期间振据数次使充分案解。最出过滤，2周后使用，作125mL甘油，
为姬姆萨染液
配成其应用液
使用时，取
份姬姆萨染液原液，与9份1/15mol/L磷酸盐级冲液（pH6.8）混合：pH6.8）配制方法如下：
磷酸盐缓冲液（l/15mol/L
第一液罐酸氢二钠
第二液吸磷酸
47g溶子蒸馅水1000mL中，配成1/15no/L溶液49.07g溶于蒸馏水1000mL中，配成1/15mol/溶液二氢钾
取第一液49.c加于第二液50.5mL中混勾，即为pH6.8的1/15mol/缓冲液。ON
6.6试验步骤
6.6.1细胞培养与染毒
5的条件下进行。试验前一天，将一定数量的细胞接种于培养皿（瓶）中，试验需在加入和不加人
放CO培养箱内培养。试验时吸去培养Ⅲ（瓶）中的培养液，加人一定浓度的受试样品，S，混合液（不加S，混合液时，需用培养液补足）以及一定量不含血清的培养液，放培养箱中，根据细胞周期决定处理2h~6h。结束后，吸去含受试样品的培养液，用Hemks液洗细胞3次，加人含10%胎牛血清的培养液放回培养箱，于24h或48h内收获细胞。收获前2h4h，加人细胞分裂中期阻断剂（如用秋水仙素，作用时间为4h，终浓度为1g/mL）。如果在上述加入和不加入S，混合液的条件下均获得阴性结果，则需加做长时间处理的试验，即在没有S，混合液的条件下，使受试样品与试验系统的接触时间延长至24h。当难以得出明确结论时，应更换试验条件，如改变代谢活化条件、受试样品与试验系统接触时间等重复试验。6.6.2收获细胞与制片
6.6.2.1消化：用0.25%胰蛋白酶溶液消化细胞，待细胞脱落后，加人含10%胎牛或小牛血清的培养液终止胰蛋白酶的作用，混匀，放入离心管以1000r/min～1200r/min的速度离心5min~7min，齐去3
GBZ/T240.9-2011
上清液。
6.6.2.2低渗：加人0.075mol/LKCI溶液7mL，用滴管将细胞轻轻地混勾，放人37℃水浴中低渗处理10min~15min，加人2mL固定液（甲醇：冰醋酸3：1）混匀，以1500/min速度离心5min~7min，弃去上清液
6.6.2.3固定加入7mL固定液，混勾后固定7min，以1500/min速度离心7min，弃去上清液。用同法再固定1次～2次，弃去上清液。6.6.2.4滴片：加人数滴新鲜固定液，混勾。用混悬液滴片，白然于燥。6.6.2.5染色：用姬姆萨染液染色。6.6.3镜检
每一剂量组选择200个分散良好的中期分裂相，在显微镜油镜下进行读片。在读片时应记录每一观察细胞的染色体数月，对于畸变细胞还应记录显微镜视标位置及畸变类型。所有处理组、阳性和阴性对照组均需测定有丝分裂指数。每一剂量组应分析不少于1000个分散良好的中期分裂相。7数据处理与结果评价
7.1数据处理
结果数据的计算指标包括每个细胞染色体畸变数、染色体结构异常百分率、各剂量组及对照组不同类型染色体异常数与频率等。分裂细胞数应另计，一般不包括在总异常频率中。所得各组的染色体畸变率用x检验进行统计学处理，以评价剂量组和对照组之间是否有显著性差异。7.2结果评价
在下列两种情况下可判定受试样品在本试验系统中为阳性结果：a）受试样品引起染色体结构畸变数的增加具有统计学意义，并有与剂量相关的增加；b）受试样品在任何一个剂量条件下，引起染色体结构畸变数的增加具有统计学意义，并有可重复性。评价时应综合考虑生物学和统计学意义。8评价报告
除GBZ/T240.1规定的一般项目外，评价报告还应包括以下内容：a）所用溶剂及其配制、剂量选择（应说明受试样品的细胞毒性测定方法、溶解情况等）；细胞株名称；
试验条件和方法；
代谢活化系统所用酶诱导剂、米源及S混合液配方；培养液名称与血清类别和使用溶解情况，一阳性对照物名称和选用浓度：阴性（溶剂）对照物名称及使用浓度；一接种的细胞密度以及所用培养Ⅲ（瓶）的规格；一中期分裂阻断剂名称、所用浓度和作用时间；一受试样品与试验系统的接触时间。d）简述制片方法；
毒性特征、细胞周期资料、分裂指数、受试样品的pH值、畸变（包括裂隙分析）、各试验组（剂量组、阳性组、阴性组）染色体畸变数目及畸变类型、畸变范围、剂量-反应关系、统计处理方法、本实验室历史上的染色体畸变率范围、均值和标准差（说明样品数）；4
f）结论。
9结果解释
GBZ/T240.9—2011
阳性结果表明受试样品在该试验条件下可引起所用哺乳动物细胞染色体畸变。阴性结果表明在该试验条件下受试样品不引起所用哺乳动物动物细胞染色体畸变、GBZ/T240.9—2011
A.1诱导
附录A
（资料性附录）
大鼠肝微粒体酶的诱导和S，的制备应用最广泛的大鼠肝微粒体酶的诱导剂是多氯联苯（PCB）混合物，选择健康雄性大鼠体重200g左右，一次腹腔注射诱导剂500mg/kg。诱导剂溶于玉米油中，浓度为200mg/mL。A.2S.制备
动物诱导后第五日断头处死。处死前12h停止饮食，但可自由饮水。首先，用75%酒精消声动物皮肤，剖开腹部。在无菌条件下，取出肝脏，去除肝脏的结缔组织，用冰浴的0.15mol/L氯化钾淋洗肝脏，放人盛有0.15mol/L氯化钾溶液的烧杯里。按每克肝脏加人0.15mol/1.氟化钾溶液3mL。用电动勾浆器制成肝勾浆，再在低温高速离心机上，在4℃条件下，以9000g离心10min，取其上清液分装于塑料管中。每管装2mL~3mL。储存于液氮生物容器中或一80℃冰箱中备用。上述全部操作均在冰水浴中和无菌条件下进行。制备肝S：所用一切手术器械、器血等，均经灭菌消毒。S，制备后，其活力需经诊断性诱变剂进行鉴定。
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