GB 23200.63-2016 食品安全国家标准 食品中噻酰菌胺残留量的测定 液相色谱-质谱 质谱法 GB23200.63-2016 标准压缩包解压密码：www.bzxz.net

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中华人民共和国国家标准标准
GB23200.632016
代替SN/T25142010
食品安全国家标准
食品中噻酰菌胺残留量的测定
液相色谱-质谱/质谱法
Nationalfood safety standards-DeterminationoftiadinilresidueinfoodsLiquid chromatography-massspectrometry2016-12-18发布
2017-06-18实施
中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会中华人民共和国农业部
国家食品药品监督管理总局
GB23200.632016
本标准代替SN/T2514-2010《进出口食品中噻酰菌胺农药残留量的测定液相色谱-质谱质谱法》本标准与SN/T2514-2010相比，主要变化如下：一标准文本格式修改为食品安全国家标准文本格式一标准名称和范围中“进出口食品”改为“食品”；一标准范围中增加“其它食品可参照执行”。本标准所代替标准的历次版本发布情况为：—SN/T2514-2010。
食品安全国家标准
GB23200.63-2016
食品中酰菌胺农药残留量的测定液相色谱一质谱/质谱法1范围
本标准规定了食品中噻酰菌胺农药残留量的液相色谱-质谱/质谱检测方法。本标准适用于生菜、胡萝卜、菜心、大米、柑橘、葡萄、板栗、牛肉、羊肝、鸡肉、罗非鱼、番茄酱、茶叶、蜂蜜中噻酰菌胺农药残留的定性鉴定/定量测定，其它食品可参照执行。2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB2763食品安全国家标准食品中农药最大残留限量GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法3原理
试样用乙酸乙酯提取，凝胶色谱（GPC）和固相萃取小柱净化，液相色谱-质谱/质谱测定和确证，外标法定量。
4试剂和材料
除另有规定外，所有试剂均为分析纯，水为符合GB/T6682中规定的一级水。4.1试剂
4.1.1环已烷（CH12，110-82-7）：色谱纯。4.1.2乙酸乙酯（C.H.O2，141-78-6）：色谱纯。4.1.3乙腈（C,H,N，75-05-8）：色谱纯。4.1.4
甲醇（CH.O，67-56-1））：色谱纯。4.1.5
无水硫酸钠（NazSO4，15124-09-1）：650℃灼烧4h，在干燥器内冷却至室温，储于密封瓶中备用。
4.1.6氯化钠（NaCl，7647-14-5）。4.2标准品
4.2.1噻酰菌胺（tiadinil）标准品（CnHioCINOS，CAS号：223580-51-6）：纯度≥97.0%4.3标准溶液配制
4.3.1噻酰菌胺农药标准储备液：准确称取适量噻酰菌胺农药标准物质，用乙睛配制成浓度为1.0mg/mL的标准储备液。
4.3.2噻酰菌胺标准中间溶液：准确吸取适量标准储备液，用乙睛稀释至浓度为10.0ug/mL的标准中间溶液。
4.3.3噻酰菌胺标准工作液：使用前根据需要将标准中间溶液用各种样本的空白基质稀释成适当浓度的标准工作液。
4.4材料
4.4.1氨基固相萃取柱：200mg，3mL和500mg，3mL，或相当者。临用前用乙睛将氨基柱（200mg）活化2次，每次2mL。在氨基柱（500mg）上填装0.5g无水硫酸钠，临用前用乙酸乙酯活化2次，每次2mL。
4.4.2CHROMABONDXTR固相萃取柱（大孔径硅藻土填料）：3000mg，15mL，或相当者。4.4.3微孔滤膜：0.2μm和0.45μm，有机相。5仪器和设备
5.1液相色谱-质谱/质谱仪：配有电喷雾离子源。5.2凝胶渗透色谱仪。
5.3分析天平：感量0.01g和0.0001g。5.4高速均质机。
5.5高速低温冷冻离心机：10000r/min。5.6旋转蒸发仪。
5.7氮气吹干仪。
5.8旋涡震荡器。
5.9聚四氟乙烯塑料离心管：50mL，具塞。5.10玻璃刻度试管，5mL和10mL，具塞。5.11鸡心瓶：50mL。
6试样制备与保存
6.1试样制备
6.1.1生菜、胡萝卜、菜心、柑橘、葡萄GB23200.632016
取有代表性样品约500g，将其切碎后，用捣碎机加工成浆状。混匀，装入洁净容器，密封，标明标记。
6.1.2大米、板栗、茶叶
取有代表性样品约500g，用粉碎机粉碎并通过孔径2.0mm圆孔筛。混匀，装入洁净容器，密闭，标明标记。
6.1.3牛肉、鸡肉、羊肝、罗非鱼取有代表性样品约500g，用绞肉机绞碎，混匀，装入洁净容器，密闭，标明标记。6.1.4番茄酱
取有代表性样品约500g，混匀，装入洁净容器，密闭，标明标记。6.1.5蜂蜜
取代表性样品约500g，对无结晶的蜂蜜样品将其搅拌均匀：对有结晶析出的蜂蜜样品，在密闭情况下，将样品瓶置于不超过60℃的水浴中温热，振荡，待样品全部融化后搅匀，迅速冷却至室温，在融化时必须注意防止水分挥发。装入洁净容器，密封，标明标记。注：以上样品取样部位按GB2763附录A执行。6.2试样保存
茶叶、蜂蜜、粮谷及坚果类等试样于0~4℃保存；水果蔬菜类和动物源性食品等试样于-18℃以下冷冻保存。在抽样及制样的操作过程中，应防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。7分析步骤
7.1提取
7.1.1生菜、胡萝卜、菜心、柑橘、葡萄、板栗、牛肉、羊肝、鸡肉、罗非鱼、番茄酱称取10g（精确至0.01g）试样于50mL离心管中，加15.0mL乙酸乙酯，匀质提取1min，另取一个50mL离心管，加入10.0mL乙酸乙酯洗匀质器刀头，合并均质液。加入10g无水硫酸钠，振荡10min。提取液10000r/min离心5min，吸取10.0mL上清液，冰箱0℃以下放置10h，过0.45μm有机滤膜，待凝胶渗透色谱净化。7.1.2大米
称取10g（精确至0.01g）试样于50mL离心管中，加入10.0mL水，浸泡20min，加15.0mL乙酸乙酯，匀质提取1min，另取一个50mL离心管，加入10.0mL乙酸乙酯洗匀质器刀头，合并均质液加入10g无水硫酸钠，振荡10min。将样本提取液10000r/min离心5min，吸取10.0mL上清液，冰箱0℃以下放置10h，再过0.45um有机滤膜，待凝胶渗透色谱净化。7.1.3茶叶
称取2g（精确至0.01g）试样于50mL离心管中，加入10.0mL水，浸泡20min，再加入1g无水硫酸钠，涡旋振荡1min。加入10.0mL乙酸乙酯，涡旋振荡2min，将样本提取液4000r/min离心5min，吸取上清液。再加入10.0mL乙酸乙酯，涡旋振荡2min，4000r/min离心5min，重复提取一次：合并二次的上清液，45℃吹氮浓缩至2mL左右，定容至10mL，过0.45μum有机滤膜，待凝胶渗透色谱净化。
7.1.4蜂蜜
GB23200.632016
称取2.0g（精确至0.01g）试样于50mL离心管中，加3mL水，0.5g氯化钠，震荡混匀，过XTR固相萃取柱。上样后，将样本液保持5min，用35mL乙酸乙酯分多次淋洗，流速控制为1.0mL/min，收集滤液于50mL鸡心瓶中，在45℃下减压浓缩至约0.5mL，待净化。7.2净化
7.2.1生菜、胡萝卜、菜心、柑橘、葡萄、板栗、牛肉、羊肝、鸡肉、罗非鱼、番茄酱、大米、茶叶将7.1.1、7.1.2、7.1.3的所得溶液10mL，过凝胶渗透色谱仪，收集7~14min的流出液，操作浓缩装置，在45℃下浓缩至近干，2mL乙睛定容，作为初净化液。将初净化液过氨基柱（200mg）后，用乙睛洗涤收集瓶3次，每次1mL，洗液同样过柱，流速控制为1mL/min，收集全部过柱溶液于吹氮管中，在45℃下吹氮浓缩至近干，用甲醇定容至1.0mL，再加入1.0mL去离子水，涡漩振荡均匀，过0.2μm有机滤膜，待测。7.2.2蜂蜜
将浓缩液过氨基柱（500mg），4mL乙酸乙酯分三次洗脱，流速控制为1mL/min，收集洗脱液于吹氮管中，在45℃下吹氮浓缩干，用甲醇定容至1.0mL，再加入1.0mL去离子水，涡漩振荡均匀，过0.2μm有机滤膜，待测。
7.3测定
7.3.1凝胶色谱净化条件
7.3.1.1凝胶净化柱：Bio-Beads，S-X3，300mm×25（内径）mm；38Hm~75Hm。7.3.1.2浓缩时温度：45℃。
7.3.1.3流动相：环已烷一乙酸乙酯（50+50，体积比）。7.3.1.4定容试剂：乙睛。
7.3.1.5流速：4.7mL/min。
7.3.1.6进样量：5mL。
7.3.2LC—MS/MS质谱参考条件
7.3.2.1液相色谱参考条件
a）色谱柱：WatersAtlantisHilicSilica柱，3Hm，3.0mm（i.d）X50mm，或相当者。b）柱温：40℃。
c）流动相：甲醇一水（90+10，体积比）。d）流速：0.30mL/min。
e）进样量：10。
7.3.2.2质谱测定参考条件
参见附录A。
7.3.3色谱测定与确证
根据样液中噻酰菌胺含量情况，选定峰面积相近的标准工作溶液。标准工作溶液和样液中噻酰菌胺响应值均应在仪器检测线性范围内。标准工作溶液和样液等体积参插进样测定。在上述色谱条件下，噻酰菌胺的保留时间约为1.01min。被测组分选择1个母离子，2个以上子离子，在相同实验条件下，如果样品中待检测物质与标准溶液中对应的保留时间偏差在2.5%之内：且样品谱图中各组分定性离子的相对丰度与浓度接近的标准溶液谱图中对应的定性离子的相对丰度进行比较，偏差不超过表1规定的范围，被确证的样品可判定为噻酰菌胺阳性检出。标准品的质谱图见附录B中图B.1、B.2。表1定性确证时相对离子丰度的最大允许偏差相对丰度（基峰）
允许的相对偏差
7.4空白实验
除不加试样外，均按上述测定步骤进行。结果计算和表述
>20%至50%
>10%至20%
≤10%
用色谱数据处理机或按下式（1）计算试样中噻酰菌胺农药的含量，计算结果需扣除空白值。3
式中：
样液中噻酰菌胺残留含量，单位为纳克每克（ng/g)：样液中噻酰菌胺的色谱峰面积；标准工作溶液中噻酰菌胺浓度，单位为纳克每毫升（ng/mL)；最终样液的定容体积，单位为毫升（mL)：标准工作溶液中噻酰菌胺的色谱峰面积；最终样液所代表试样质量，单位为克（g）。m
注：计算结果应扣除空白值，测定结果用平行测定的算术平均值表示，保留两位有效数字。9精密度
GB23200.632016
9.1在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值（百分率），应符合附录D的要求。
9.2在再现性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值（百分率），应符合附录E的要求。
10定量限和回收率
10.1定量限
本方法噻酰菌胺农药定量限为10μg/kg。10.2回收率
当添加水平为10ug/kg、20ug/kg、50μg/kg时，噻酰菌胺在不同基质中的添加回收率参见附录C。4
参考质谱条件
a）离子源：电喷雾离子源（ESI）b）扫描方式：负离子扫描。
附录A
（资料性附录）
参考质谱条件
c）检测方式：多反应选择离子检测（MRM）。d）电喷雾电压（IS）：4500V。GB23200.632016
e）雾化气、气帘气、辅助加热气、碰撞气均为高纯氮气及其它合适气体：使用前应调节各气体流量以使质谱灵敏度达到检测要求。f）辅助气温度（TEM)：500℃。g）离子源温度：500℃。
h）定性离子对、定量离子对、采集时间、去簇电压及碰撞能量见表A.1。表A.1噻酰菌胺监测离子对、定量离子对、去簇电压及碰撞能去簇电压
被测物名称
噻酰菌胺
监测离子对
/ (m/z)
265.9/70.9
265.9/237.9
定量离子对
/ (m/z)
265.9/70.9
驻留时间
注：对于不同质谱仪器，仪器参数可能存在差异，测定前应将质谱参数优化到最佳。碰撞能量
非商业性声明：附录A所列参考质谱条件是在API3000型液质联用仪上完成的，此处列出试验用仪器型号仅为提供参考，并不涉及商业目的，鼓励标准使用者尝试不同厂家或型号的仪器。5
附录B
（资料性附录）
噻酰菌胺标准品LC/MS-MS质谱图178.1
101102u3u4u
m/z anu
噻酰菌胺标准品子离子全扫描质谱图1.00
7=o= -
265.9/70. 9
GB23200.632016
2ou2su2iu
265. 9/237.9
Tine rinWww.bzxZ.net
图B.2噻酰菌胺标准品多反应监测(MRM)色谱图（10μg/L)附录C
（资料性附录）
不同基质中噻酰菌胺农药的添加回收率表C，1
样品基质
胡萝卜
番茄酱
罗非鱼
添加浓度（μg/kg）
回收率（%）
92.4~108.0
78.5~95.0
71.8~91.0
78.6~91.6
88.5~105.0
76.0~95.8
100.0~109.0
89.5~108.0
97.8~107.8
99.4109.0
89.0~107.5
98.6110.2
87.7~110.0
76.0~104.5
90.6~105.8
93.4~110.0
91.0~117.0
87.4~109.4
92.0102.0
88.0~104.5
90.8~101.6
90.7~103.0
87.5~104.5
87.6~97.4
88.4~104.0
90.0~99.0
86.6~94.4
82.0~105.8
67.7~87.4
86.5~100.0
96.8~105.6
72.8~95.7
78.5~109.5
68.2~101.4
90.7~109.0
90.0104.0
93.2104.4
103.8~111.0
77.4~93.4
83.0~116.0
79.6~99.2
85.0~105.0
75.5104.5
79.8~87.2
GB23200.632016
被测组分含量
>0.001≤0.01
>0.01≤0.1
（规范性附录）
实验室内重复性要求
表D.1实验室内重复性要求
精密度
GB23200.63—2016
被测组分含量
>0.001≤0.01
>0.01≤0.1
（规范性附录）
实验室间再现性要求
表E.1实验室间再现性要求
精密度
GB23200.63—2016
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