GB 23200.66-2016
基本信息
标准号： GB 23200.66-2016
中文名称：食品安全国家标准 食品中吡螨胺残留量的测定 气相色谱-质谱法
标准类别：国家标准(GB)
标准状态：现行
出版语种：简体中文
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相关标签： 食品安全 国家标准 食品 残留量 测定 相色谱 质谱法
标准分类号
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标准简介
GB 23200.66-2016 食品安全国家标准 食品中吡螨胺残留量的测定 气相色谱-质谱法
GB23200.66-2016
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中华人民共和国国家标准
GB23200.662016
代替SN/T26462010
食品安全国家标准
食品中吡螨胺残留量的测定
气相色谱一质谱法
National food safety standards -DeterminationoftebufenpyradresidueinfoodsGaschromatography-massspectrometry2016-12-18发布
2017-06-18实施
中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会中华人民共和国农业部
国家食品药品监督管理总局
GB23200.662016
本标准代替SN/T2646-2010
《进出口食品中吡螨胺残留量检测方法气相色谱-质谱法》本标准与SN/T2646-2010相比，主要变化如下：标准文本格式修改为食品安全国家标准文本格式：一标准名称和范围中“出口食品”改为“食品”：标准范围中增加“其它食品可参照执行”。本标准所代替标准的历次版本发布情况为：—SN/T2646-2010。
1范围
食品安全国家标准
GB23200.662016
食品中吡螨胺残留量的测定气相色谱一质谱法本标准规定了食品中吡螨胺残留量检测和制样、气相色谱-质谱检测和确证方法。本标准适用于菠菜、藕、草莓、花生、鸡肉、猪肉、鳕鱼、蜂蜜、板栗和茶叶中吡螨胺残留量的测定和确证；其它食品可参照执行。2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB2763食品安全国家标准食品中农药最大残留限量GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法3原理
试样经乙睛提取，以正已烷液液分配和硅酸镁固相萃取柱净化，用气相色谱-负化学源质谱测定外标法定量。
4试剂和材料
除另有规定外，所有试剂均为分析纯，水为符合GB/T6682中规定的一级水。4.1试剂
4.1.1丙酮（C3H.O)：残留级。
4.1.2乙睛（C,H,N)：农药残留级。4.1.3正已烷（C6Hi4)：农药残留级。4.1.4氯化钠（NaCI）：650℃灼烧4h，置入干燥器中冷却，备用。4.2溶液配制
4.2.1丙酮-正已烷（3+7)：取300mL丙酮，加入700mL正已烷，摇匀备用。4.3标准品
4.3.1吡螨胺标准品（Tebufenpyrad，CrsHaC1NO）：纯度≥96.5%。4.4标准溶液配制
4.4.1吡螨胺标准溶液的配制：准确称取适量标准品，用少量的丙酮溶解，并以丙酮配制成浓度为1.0mg/mL的标准储备液。根据需要再用丙酮-正已烷稀释成适当浓度的标准工作溶液。保存于-18℃冰箱中，
4.5材料
4.5.1硅酸镁（CleanertFlorisi1)固相萃取柱：500mg，3mL或相当者。5仪器与设备
5.1气相色谱-质谱仪：配有负化学源。5.2分析天平：感量0.01g和0.0001g。5.3固相萃取装置。
5.4均质器。
5.5旋转蒸发器。
5.6氮气浓缩仪。
5.7具塞离心管：50mL、100mL。5.8浓缩瓶：50mL、100mL。
5.9移液管：1mL、2mL、5mL、10mL。6试样制备与保存
6.1试样制备
6.1.1粮谷
GB23200.66-2016
取有代表性样品量500g，用磨碎机全部磨碎并通过2.0mm圆孔筛。混匀，均分成两份作为试样，分装入洁净的的容器内，密闭，标明标记。6.1.2水果或蔬菜
取有代表性样品500g，切碎后，依次用食品捣碎机将样品加工成浆状。混匀，装入洁净的容器内，密闭，标明标记。
6.1.3肉及肉制品
取有代表性样品500g，经捣碎机充分捣碎均匀，装入洁净容器内作为试样。密闭，标明标记。6.1.4蜂蜜及蜂制品
取有代表性样品量500g，对无结晶的蜂蜜样品将其搅拌均匀：对有结晶析出的蜂蜜样品，在密闭情况下，将样品瓶置于不超过60℃的水浴中温热，振荡，待样品全部融化后搅匀，迅速冷却至室温，在融化时必须注意防止水分挥发。装入洁净的容器，密闭，标明标记。6.1.5茶叶
取有代表性样品500g，用磨碎机全部磨碎并通过2.0mm圆孔筛。混匀，装入洁净的洁净容器内，密闭，标明标记。
6.1.6坚果
取有代表性样品500g，用磨碎机全部磨碎。混匀，均分成两份作为试样，分装入洁净的洁净容器内，密闭，标明标记
6.1.7水产品
取有代表性样品500g，从所取样品中取出约1kg，取可食部分经捣碎机充分捣碎均匀，均分成两份，分别装入洁净容器内作为试样。密封并标明标记。注：以上样品取样部位按GB2763附录A执行。6.2试样保存
粮谷类试样于0-4℃保存；水果和蔬菜及其它类试样于-18℃以下冷冻保存。在抽样及制样的操作过程中，应防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。7分析步骤
7.1提取
称取10g试样（精确至0.1g）于100mL具塞离心管中，加入10mL水，准确加入50mL饱和乙睛，用均质器高速匀浆提取2min（酱油和蜂蜜仅需剧烈振荡10min），再加入5g氯化钠，剧烈震荡10min，3000r/min离心10min。7.2净化
7.2.1液/液分配净化
取上层提取液20mL（菠菜、藕、草莓）或10mL（花生、鸡肉、猪肉、鳕鱼、蜂蜜、板栗和茶叶）转移至50mL具塞离心管中，加入10mL饱和正已烷，振摇3min，静置分层，弃去上层正已烷相，再用10mL正已烧重复操作一次，弃去正已烷相：下层乙睛相收集于100mL浓缩瓶中，于40℃水浴中浓缩至近1mL。
7.2.2固相萃取（SPE）净化
使用前用5mL丙酮-正已烷预淋Florisi1柱。将样液倾入柱中，用12mL丙酮-正已烷进行洗2
GB23200.66—2016
脱，控制流速小于等于2mL/min。收集全部洗脱液于50mL浓缩瓶中，于40℃水浴中浓缩至近干，氮气吹干。用丙酮-正已烷溶解并定容至1.0mL，供气相色谱-质谱仪测定。7.3测定
7.3.1气相色谱-质谱参考条件
a）色谱柱：HP-5MS石英毛细管柱，30m×0.25mm（i.d.），膜厚0.25Hm，或相当者：b）色谱柱温度：初始温度为70℃，以30℃/min程序升温至200℃，保持10min，再以50℃/min程序升温至270℃，保持4min。
c）进样口温度：250℃；
d）色谱-质谱接口温度：280℃；e）载气：氢气，纯度大于等于99.999%，恒压模式，柱头压1.45Mpa）；f）进样量：1；
g）进样方式：无分流进样，0.65min后开阀：h）电离方式：负化学电离：
i）离子源温度：150℃；
j）四极杆温度：150℃：
k）反应气：甲烷，纯度≥99.99%；1）测定方式：选择离子监测方式：m）选择监测离子（m/z）：定量318，定性320、333、335：n）溶剂延迟：4.0min。
7.3.2色谱测定与确证
根据样液中被测物含量情况，选定浓度相近的标准工作溶液，对标准工作溶液与样液等体积参插进样测定，标准工作溶液和待测样液中吡螨胺的响应值均应在仪器检测的线性范围内。如果样液与标准工作溶液的选择离子色谱图中，在相同保留时间有色谱峰出现，并且在扣除背景后的样品质量色谱中，所选离子均出现，所选择离子的丰度比与标准品对应离子的丰度比，其值在充许范围内（充许范围见表1）。在7.3.1条件下吡螨胺保留时间是16.18min，其监测离子（m/z）为m/z318、320、333、335（其丰度比为100:39：95：33）对其进行确证：根据定量离子m/z318对其进行外标法定量。在7.3.1条件下吡螨胺标准物的气相色谱一质谱总离子流色谱图和全扫描质谱图见附录A中图A.1和A.2。
表1使用定性气相色谱-质谱时相对离子丰度最大容许误差相对丰度（基峰）
允许的相对偏差
结果计算和表述
>20%至50%
用色谱数据处理机或按(1)式计算试样中四氟醚唑残留量：hxexv
式(1)中：
X一一试样中吡螨胺残留量，单位为毫克每千克（mg/kg）；h
一样液中吡螨胺的色谱峰高；
h。一一标准工作液中吡螨胺的色谱峰高；C
>10%至20%
标准工作液中吡螨胺的浓度，单位为微克每毫升（μg/mL）；V一一样液最终定容体积，单位为毫升（mL）；3
≤10%
最终样液所代表的试样质量，单位为克（g）。m
注：计算结果须扣除空白值，测定结果用平行测定的算术平均值表示，保留两位有效数字。精密度
GB23200.66—2016
9.1在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值（百分率），应符合附录C的要求。
9.2在再现性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值（百分率），应符合附录D的要求。
定量限和回收率
10.1定量限
本方法吡螨胺的定量限为2μg/kg10.2回收率
当添加水平为0.002mg/kg、0.004mg/kg、0.01mg/kg时，吡螨胺的添加回收率参见附录B。4
附录A
（资料性附录）
吡螨胺标准物质总离子流色谱图图A.1吡螨胺标准物的总离子流色谱图吡螨胺标准物质的质谱图
扫描。1575（16.210分）：100PPB.D）GB23200.662016
308318372 374376378320322324 326 328 330332334 33633830342344图A.2吡螨胺标准物质质谱图
添加浓度(μg/kg)
附录B
(资料性附录）
不同基质中的添加回收率
表B.1不同基质中的添加回收率
回收率范围(%)
90.0~110.0
95.0~107.5
97.0~112.0
95.0~110.0
97.5110.0
96.0112.0
81.5~100.8
92.5~107.5
96.0~112.0
90.0~110.0
90.0~112.5
94.0~117.0
90.0~110.0
95.0~107.5
94.0~112.0
添加浓度(μg/kg)
GB23200.662016
回收率范围(%)
90.0~110.0
92.5~107.5
97.0~119.0
90.0~110.0
92.5~107.5
96.0~112.0
95.0~115.0
92.5~107.5
95.0~114.0
90.0~110.0
97.5~112.5
97.0~113.0
90.0~110.0
92.5~112.5
94.0~112.0
被测组分含量
>0.001≤0.01
>0.01≤0.1
附录c
（规范性附录）
实验室内重复性要求
表C.1实验室内重复性要求
精密度免费标准bzxz.net
GB23200.66—2016
被测组分含量
>0.001≤0.01
>0.01≤0.1
附录D
（规范性附录）
实验室间再现性要求
表D.1实验室间再现性要求
精密度
GB23200.662016
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中华人民共和国国家标准
GB23200.662016
代替SN/T26462010
食品安全国家标准
食品中吡螨胺残留量的测定
气相色谱一质谱法
National food safety standards -DeterminationoftebufenpyradresidueinfoodsGaschromatography-massspectrometry2016-12-18发布
2017-06-18实施
中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会中华人民共和国农业部
国家食品药品监督管理总局
GB23200.662016
本标准代替SN/T2646-2010
《进出口食品中吡螨胺残留量检测方法气相色谱-质谱法》本标准与SN/T2646-2010相比，主要变化如下：标准文本格式修改为食品安全国家标准文本格式：一标准名称和范围中“出口食品”改为“食品”：标准范围中增加“其它食品可参照执行”。本标准所代替标准的历次版本发布情况为：—SN/T2646-2010。
1范围
食品安全国家标准
GB23200.662016
食品中吡螨胺残留量的测定气相色谱一质谱法本标准规定了食品中吡螨胺残留量检测和制样、气相色谱-质谱检测和确证方法。本标准适用于菠菜、藕、草莓、花生、鸡肉、猪肉、鳕鱼、蜂蜜、板栗和茶叶中吡螨胺残留量的测定和确证；其它食品可参照执行。2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB2763食品安全国家标准食品中农药最大残留限量GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法3原理
试样经乙睛提取，以正已烷液液分配和硅酸镁固相萃取柱净化，用气相色谱-负化学源质谱测定外标法定量。
4试剂和材料
除另有规定外，所有试剂均为分析纯，水为符合GB/T6682中规定的一级水。4.1试剂
4.1.1丙酮（C3H.O)：残留级。
4.1.2乙睛（C,H,N)：农药残留级。4.1.3正已烷（C6Hi4)：农药残留级。4.1.4氯化钠（NaCI）：650℃灼烧4h，置入干燥器中冷却，备用。4.2溶液配制
4.2.1丙酮-正已烷（3+7)：取300mL丙酮，加入700mL正已烷，摇匀备用。4.3标准品
4.3.1吡螨胺标准品（Tebufenpyrad，CrsHaC1NO）：纯度≥96.5%。4.4标准溶液配制
4.4.1吡螨胺标准溶液的配制：准确称取适量标准品，用少量的丙酮溶解，并以丙酮配制成浓度为1.0mg/mL的标准储备液。根据需要再用丙酮-正已烷稀释成适当浓度的标准工作溶液。保存于-18℃冰箱中，
4.5材料
4.5.1硅酸镁（CleanertFlorisi1)固相萃取柱：500mg，3mL或相当者。5仪器与设备
5.1气相色谱-质谱仪：配有负化学源。5.2分析天平：感量0.01g和0.0001g。5.3固相萃取装置。
5.4均质器。
5.5旋转蒸发器。
5.6氮气浓缩仪。
5.7具塞离心管：50mL、100mL。5.8浓缩瓶：50mL、100mL。
5.9移液管：1mL、2mL、5mL、10mL。6试样制备与保存
6.1试样制备
6.1.1粮谷
GB23200.66-2016
取有代表性样品量500g，用磨碎机全部磨碎并通过2.0mm圆孔筛。混匀，均分成两份作为试样，分装入洁净的的容器内，密闭，标明标记。6.1.2水果或蔬菜
取有代表性样品500g，切碎后，依次用食品捣碎机将样品加工成浆状。混匀，装入洁净的容器内，密闭，标明标记。
6.1.3肉及肉制品
取有代表性样品500g，经捣碎机充分捣碎均匀，装入洁净容器内作为试样。密闭，标明标记。6.1.4蜂蜜及蜂制品
取有代表性样品量500g，对无结晶的蜂蜜样品将其搅拌均匀：对有结晶析出的蜂蜜样品，在密闭情况下，将样品瓶置于不超过60℃的水浴中温热，振荡，待样品全部融化后搅匀，迅速冷却至室温，在融化时必须注意防止水分挥发。装入洁净的容器，密闭，标明标记。6.1.5茶叶
取有代表性样品500g，用磨碎机全部磨碎并通过2.0mm圆孔筛。混匀，装入洁净的洁净容器内，密闭，标明标记。
6.1.6坚果
取有代表性样品500g，用磨碎机全部磨碎。混匀，均分成两份作为试样，分装入洁净的洁净容器内，密闭，标明标记
6.1.7水产品
取有代表性样品500g，从所取样品中取出约1kg，取可食部分经捣碎机充分捣碎均匀，均分成两份，分别装入洁净容器内作为试样。密封并标明标记。注：以上样品取样部位按GB2763附录A执行。6.2试样保存
粮谷类试样于0-4℃保存；水果和蔬菜及其它类试样于-18℃以下冷冻保存。在抽样及制样的操作过程中，应防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。7分析步骤
7.1提取
称取10g试样（精确至0.1g）于100mL具塞离心管中，加入10mL水，准确加入50mL饱和乙睛，用均质器高速匀浆提取2min（酱油和蜂蜜仅需剧烈振荡10min），再加入5g氯化钠，剧烈震荡10min，3000r/min离心10min。7.2净化
7.2.1液/液分配净化
取上层提取液20mL（菠菜、藕、草莓）或10mL（花生、鸡肉、猪肉、鳕鱼、蜂蜜、板栗和茶叶）转移至50mL具塞离心管中，加入10mL饱和正已烷，振摇3min，静置分层，弃去上层正已烷相，再用10mL正已烧重复操作一次，弃去正已烷相：下层乙睛相收集于100mL浓缩瓶中，于40℃水浴中浓缩至近1mL。
7.2.2固相萃取（SPE）净化
使用前用5mL丙酮-正已烷预淋Florisi1柱。将样液倾入柱中，用12mL丙酮-正已烷进行洗2
GB23200.66—2016
脱，控制流速小于等于2mL/min。收集全部洗脱液于50mL浓缩瓶中，于40℃水浴中浓缩至近干，氮气吹干。用丙酮-正已烷溶解并定容至1.0mL，供气相色谱-质谱仪测定。7.3测定
7.3.1气相色谱-质谱参考条件
a）色谱柱：HP-5MS石英毛细管柱，30m×0.25mm（i.d.），膜厚0.25Hm，或相当者：b）色谱柱温度：初始温度为70℃，以30℃/min程序升温至200℃，保持10min，再以50℃/min程序升温至270℃，保持4min。
c）进样口温度：250℃；
d）色谱-质谱接口温度：280℃；e）载气：氢气，纯度大于等于99.999%，恒压模式，柱头压1.45Mpa）；f）进样量：1；
g）进样方式：无分流进样，0.65min后开阀：h）电离方式：负化学电离：
i）离子源温度：150℃；
j）四极杆温度：150℃：
k）反应气：甲烷，纯度≥99.99%；1）测定方式：选择离子监测方式：m）选择监测离子（m/z）：定量318，定性320、333、335：n）溶剂延迟：4.0min。
7.3.2色谱测定与确证
根据样液中被测物含量情况，选定浓度相近的标准工作溶液，对标准工作溶液与样液等体积参插进样测定，标准工作溶液和待测样液中吡螨胺的响应值均应在仪器检测的线性范围内。如果样液与标准工作溶液的选择离子色谱图中，在相同保留时间有色谱峰出现，并且在扣除背景后的样品质量色谱中，所选离子均出现，所选择离子的丰度比与标准品对应离子的丰度比，其值在充许范围内（充许范围见表1）。在7.3.1条件下吡螨胺保留时间是16.18min，其监测离子（m/z）为m/z318、320、333、335（其丰度比为100:39：95：33）对其进行确证：根据定量离子m/z318对其进行外标法定量。在7.3.1条件下吡螨胺标准物的气相色谱一质谱总离子流色谱图和全扫描质谱图见附录A中图A.1和A.2。
表1使用定性气相色谱-质谱时相对离子丰度最大容许误差相对丰度（基峰）
允许的相对偏差
结果计算和表述
>20%至50%
用色谱数据处理机或按(1)式计算试样中四氟醚唑残留量：hxexv
式(1)中：
X一一试样中吡螨胺残留量，单位为毫克每千克（mg/kg）；h
一样液中吡螨胺的色谱峰高；
h。一一标准工作液中吡螨胺的色谱峰高；C
>10%至20%
标准工作液中吡螨胺的浓度，单位为微克每毫升（μg/mL）；V一一样液最终定容体积，单位为毫升（mL）；3
≤10%
最终样液所代表的试样质量，单位为克（g）。m
注：计算结果须扣除空白值，测定结果用平行测定的算术平均值表示，保留两位有效数字。精密度
GB23200.66—2016
9.1在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值（百分率），应符合附录C的要求。
9.2在再现性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值（百分率），应符合附录D的要求。
定量限和回收率
10.1定量限
本方法吡螨胺的定量限为2μg/kg10.2回收率
当添加水平为0.002mg/kg、0.004mg/kg、0.01mg/kg时，吡螨胺的添加回收率参见附录B。4
附录A
（资料性附录）
吡螨胺标准物质总离子流色谱图图A.1吡螨胺标准物的总离子流色谱图吡螨胺标准物质的质谱图
扫描。1575（16.210分）：100PPB.D）GB23200.662016
308318372 374376378320322324 326 328 330332334 33633830342344图A.2吡螨胺标准物质质谱图
添加浓度(μg/kg)
附录B
(资料性附录）
不同基质中的添加回收率
表B.1不同基质中的添加回收率
回收率范围(%)
90.0~110.0
95.0~107.5
97.0~112.0
95.0~110.0
97.5110.0
96.0112.0
81.5~100.8
92.5~107.5
96.0~112.0
90.0~110.0
90.0~112.5
94.0~117.0
90.0~110.0
95.0~107.5
94.0~112.0
添加浓度(μg/kg)
GB23200.662016
回收率范围(%)
90.0~110.0
92.5~107.5
97.0~119.0
90.0~110.0
92.5~107.5
96.0~112.0
95.0~115.0
92.5~107.5
95.0~114.0
90.0~110.0
97.5~112.5
97.0~113.0
90.0~110.0
92.5~112.5
94.0~112.0
被测组分含量
>0.001≤0.01
>0.01≤0.1
附录c
（规范性附录）
实验室内重复性要求
表C.1实验室内重复性要求
精密度免费标准bzxz.net
GB23200.66—2016
被测组分含量
>0.001≤0.01
>0.01≤0.1
附录D
（规范性附录）
实验室间再现性要求
表D.1实验室间再现性要求
精密度
GB23200.662016
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