GB/T 37363.4-2020.Determination of biocides content of coating materials-Part 4: Determination of carbendazim content.
1范围
GB/T 37363的本部分规定了采用液相色谱法和液相色谱-质谱/质谱联用法测定涂料中多菌灵[N-(2-苯并咪唑基)-氨基甲酸甲酯,CAS号: 10605-21-7]含量的原理、试剂和材料、仪器设备、样品、试验步骤、试验数据处理、检出限、精密度和试验报告。
GB/T 37363.4适用于涂料中多菌灵含量的测定。涂膜及涂料用原材料中多菌灵含量的测定也可参考本部分。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T 3186色漆、清漆和色漆与清漆用原材料取样
GB/T 6682-2008分析实验室用水规格和试验方法
GB/T 12806-2011实验室玻璃仪器单标线 容量瓶
GB/T 12807-1991实验室玻璃仪器分 度吸量管
GB/T 12808-2015 实验室玻璃仪器 单标线吸 量管
3原理
液相色谱法:以甲醇为提取溶剂，用超声提取和离心分离相结合的方法提取试样中的多菌灵,用液相色谱仪(LC)检测，以保留时间定性,外标法定量。
液相色谱-质谱/质谱联用法:以甲醇为提取溶剂,用超声提取和离心分离相结合的方法提取试样中的多菌灵。用液相色谱-质谱/质谱联用仪(LC-MS/MS)检测,以保留时间和选择离子定性.外标法定量。
注1:也可选择其他经确认的合适溶剂作为提取溶剂。
注2:本部分的液相色谐包括高效液相色谱.超高效液相色谱等。

ICS87.040
中华人民共和国国家标准
GB/T37363.4—2020
涂料中生物杀伤剂含量的测定
第4部分：多菌灵含量的测定
Determination of biocides content of coating materials-Part 4:Determination of carbendazim content2020-11-19发布
国家市场监督管理总局
国家标准化管理委员会
2021-10-01实施
GB/T37363《涂料中生物杀伤剂含量的测定》分为以下几个部分：第1部分：异噻唑啉酮含量的测定；-第2部分：敌草隆含量的测定；一第3部分：三氯生含量的测定；第4部分：多菌灵含量的测定；
本部分为GB/T37363的第4部分
本部分按照GB/T1.1—2009给出的规则起草本部分由中国石油和化学工业联合会提出。本部分由全国涂料和颜料标准化技术委员会（SAC/TC5)归口。GB/T37363.4—2020
本部分起草单位：中海油常州涂料化工研究院有限公司、常州光辉新材料研究所有限公司、立邦涂料（中国）有限公司、三棵树涂料股份有限公司、深圳广田高科新材料有限公司、青岛兴国涂料有限公司、青岛职业技术学院。
本部分主要起草人：李进颖、李广东、赵绍洪、蔡雪娜、戴俊、王亚能、徐新祥、刘泊辰、梁利花、赵美法、倪维良。
rrKaerkAca-
涂料中生物杀伤剂含量的测定
第4部分：多菌灵含量的测定
GB/T37363.4—2020
警示一一使用本部分的人员应有正规实验室工作的实践经验。本部分并未指出所有可能的安全问题。使用者有责任采取适当的安全和健康措施，并保证符合国家有关法规规定的条件1范围
GB/T37363的本部分规定了采用液相色谱法和液相色谱-质谱/质谱联用法测定涂料中多菌灵LN-（2-苯并咪唑基）-氨基甲酸甲酯，CAS号：10605-21-7|含量的原理、试剂和材料、仪器设备、样品、试验步骤、试验数据处理、检出限、精密度和试验报告。本部分适用于涂料中多菌灵含量的测定。涂膜及涂料用原材料中多菌灵含量的测定也可参考本部分。
规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB/T3186色漆、清漆和色漆与清漆用原材料取样GB/T6682—2008分析实验室用水规格和试验方法GB/T12806—2011
实验室玻璃仪器单标线容量瓶
GB/T12807—1991
实验室玻璃仪器分度吸量管
GB/T12808—2015
实验室玻璃仪器单标线吸量管
3原理
液相色谱法：以甲醇为提取溶剂，用超声提取和离心分离相结合的方法提取试样中的多菌灵，用液相色谱仪(LC)检测，以保留时间定性，外标法定量。液相色谱-质谱/质谱联用法：以甲醇为提取溶剂，用超声提取和离心分离相结合的方法提取试样中的多菌灵。用液相色谱-质谱/质谱联用仪（LC-MS/MS）检测，以保留时间和选择离子定性，外标法定量。
注1：也可选择其他经确认的合适溶剂作为提取溶剂。注2：本部分的液相色谱包括高效液相色谱、超高效液相色谱等试剂和材料
除另有规定外，在分析中仅使用确认为分析纯及以上纯度的试剂。4.1甲醇：色谱纯。
4.2乙酸铵：色谱纯。
4.3多菌灵：质量分数不小于99%，或已知纯度微孔滤膜：有机相孔径0.45uμm(LC用）；孔径0.22μm（LC-MS/MS用）。4.4
不锈钢金属筛：孔径0.55mm。
rrKaerKAca-
GB/T37363.4—2020
水.GB/T66822008，级。
5仪器设备
液相色谱仪：配置紫外检测器或者二极管阵列检测器，配置反相液相色谱柱。5.2
液相色谱-质谱/质谱联用仪：配置电喷雾离子源和反相液相色谱柱。高速离心机：转速12000r/min以上，可控温5.4超声波提取仪：功率≥500W。5.5天平：精度0.1mg。
5.6容量瓶：适合的规格，GB/T12806—2011A级。5.7分度吸量管：适合的规格，GB/T12807—1991A级注：也可使用精度满足要求的其他移液设备，如活塞式移液枪等。5.8单标线吸量管：适合的规格，GB/T128082015A级注：同5.7的注。
6样品
按GB/T3186的规定取样，也可按商定方法取样，取样量根据检验需要确定。5K7试验步骤
7.1样品前处理
7.1.1平行试验
平行做两份试验。
7.1.2液相色谱法
将样品搅拌均勾[如样品为固态，可在室温下用粉碎设备将样品粉碎，并用不锈钢金属筛（4.5)过筛，称取约1g试样（精确至0.1mg），于25mL容量瓶（5.6）中，记录试样质量m，加人约10mL甲醇（4.1），充分振摇使试样得到最大程度分散，再用甲醇（4.1）稀释至刻度，充分振摇使试样得到最大程度分散，制成试样溶液，记录定容体积V。用超声波提取仪（5.4)在水浴温度不超过30℃的条件下超声提取20min后，移取适量上述溶液于离心管中，在离心机腔体温度不超过30℃的条件下离心20min~30min，至上层出现清液，记为溶液A，如离心效果不佳，不能有效分层，可适当增加转速或增加离心时间。
当选择其他溶剂作为提取溶剂时，用单标线吸量管（5.8）移取1mL清液A于10mL容量瓶（5.6）中，用甲醇（4.1)定容至刻度，记为溶液B。取适量溶液A或溶液B，用微孔滤膜（4.4)过滤，保留滤液C，用于提取溶液的测定（7.6.1）。7.1.3液相色谱-质谱/质谱联用法将样品搅拌均匀[如样品为固态，可在室温下用粉碎设备将样品粉碎，并用孔径0.55mm不锈钢金属筛（4.5)过筛]，称取约0.5g试样（精确至0.1mg），于25mL容量瓶（5.6）中，记录试样质量m，加人约10mL甲醇（4.1），充分振摇使试样得到最大程度分散，再用甲醇（4.1）稀释至刻度，充分振摇使试样得到最程度分散，制成试样溶液，记录定容体积V。用超声波提取仪（5.4)在水浴温度不超过30C的条件下超声提取20min后，移取适量上述溶液于离心管中，在离心机腔体温度不超过30℃的条件下离2
nKaeerKAca-
GB/T37363.4—2020
心20min～30min，至上层出现清液，记为溶液D.如离心效果不佳，不能有效分层，可适当增加转速或增加离心时间。
用单标线吸量管（5.8）移取1mL溶液D于25mL容量瓶（5.6）中，用甲醇（4.1）稀释至刻度（当选择其他溶剂作为提取溶剂时，仍用甲醇作为稀释溶剂），记为溶液E。取适量溶液E.用微孔滤膜（4.4）过滤，保留滤液F，用于提取溶液的测定（7.6.2）。7.2空白试验
空白试验应与测试平行进行，并采用相同的试验步骤，取相同量的所有试剂，但不加试样。7.3测试条件
7.3.1LC测试条件
根据所用LC的性能及试样的实际情况选择适宜的测试条件，液相色谱条件参见附录A中A.1。7.3.2LC-MS/MS测试条件
根据所用LC-MS/MS的性能及试样的实际情况选择适宜的测试条件，液相色谱-质谱/质谱联用条件参见附录B中B.1。
7.4配制标准工作溶液
称取约0.02g多菌灵（4.3），精确至0.1mg，于100mL容量瓶（5.6)中，用甲醇（4.1)定容至刻度，再采用逐级稀释的方法，用分度吸量管（5.7）或单标线吸量管（5.8）移取上述溶液于适合的容量瓶（5.6）中，用甲醇（4.1)稀释上述溶液成适用质量浓度的多菌灵标准工作溶液。另需配制一个不加多菌灵标样的工作溶液。标准工作溶液在4℃以下避光保存，有效期为7d。注：也可直接使用已知质量浓度的多菌灵标准溶液。7.5绘制标准工作曲线
按7.3.1或7.3.2的测试条件测定标准工作溶液，每一种标准工作溶液重复进样两次，峰面积取平均值，其相对偏差应不大于5%。以峰面积为纵坐标（扣除不加标的标准工作溶液中多菌灵的峰面积），相应质量浓度为横坐标，绘制标准工作曲线。标准工作曲线至少包括五个标准工作溶液。液相色谱法标准工作曲线的线性判定系数R2应大于0.999，液相色谱-质谱/质谱联用法标准工作曲线的线性判定系数R2应大于0.995。否则应重新绘制新的标准工作曲线。7.6提取溶液的测定
7.6.1液相色谱法
按7.3.1的测试条件测定滤液C,以保留时间定性，记录多菌灵的液相色谱图（参见A.2），对多菌灵的峰面积（扣除空白试验中多菌灵的峰面积）定量，通过标准工作曲线得出滤液C中多菌灵的质量浓度P。如滤液C中多菌灵的质量浓度超出标准工作曲线范围，可以用甲醇（4.1)适当稀释后上机测定。7.6.2液相色谱-质谱/质谱联用法按7.3.2测试条件测试滤液F。记录多反应监测（MRM)色谱图（参见B.2），对定量选择离子（参见表B.2)进行峰面积积分（扣除空白试验中多菌灵的峰面积），采用外标法定量。通过标准工作曲线得出滤液F中多菌灵质量浓度0，如滤液F中多菌灵的质量浓度超出标准工作曲线范围，可以用甲醇（4.1）适当稀释后上机测定。
nKaeerKAca-
GB/T37363.4—2020
8试验数据处理
试样中多菌灵的含量以多菌灵的质量分数w计，数值以毫克每千克（mg/kg）表示，按公式（1）计算：
=eXVXF
式中：
p——从标准工作曲线上读取的多菌灵的质量浓度，单位为微克每毫升（μg/mL)；V—试验溶液的定容体积，单位为毫升（mL）；F——试验溶液的稀释因子；
m—试样的质量，单位为克（g）。.(1)
计算两次平行试验测试结果的平均值，以平均值报出结果。当测定值小于100mg/kg时，结果表示到小数点后一位；当测定值大于或等于100mg/kg且小于1000mg/kg时，以整数值报出结果；当测定值大于或等于1000mg/kg时，以三位有效数字乘以幂次方报出结果。9检出限
液相色谱法：多菌灵的检出限为5mg/kg。液相色谱-质谱/质谱联用法：多菌灵的检出限为1mg/kg。10精密度
10.1重复性
在同一实验室，由同一操作者使用相同设备，按相同的测试方法，并在短时间内对同一被测对象相互独立进行测试获得的两次测试结果的相对偏差不大于10%，以相对偏差大于10%的情况不超过5%为前提。
10.2再现性
在不同的实验室，由不同的操作者使用不同的设备，按相同的测试方法，对同一被测对象相互独立进行测试获得的两次独立测试结果的相对偏差不大于20%，以相对偏差大于20%的情况不超过5%为前提。
11试验报告
试验报告至少应给出以下几个方面的内容：试验对象；
所使用的标准（GB/T37363.4—2020）；所使用的方法（液相色谱法或液相色谱-质谱/质谱联用法）；一所使用的甲醇以外的提取溶剂；结果；
观察到的异常现象；
试验日期。
KaeerkAca-
液相色谱条件
附录A
（资料性附录）
液相色谱法
色谱柱：Cls反相色谱柱，4.6mm×150mm，5μm。流速：0.5mL/min。
柱温：35℃。
进样量：10μL。
流动相：甲醇十水（50十50，体积比）。检测器：二极管阵列检测器(DAD)。检测波长：286nm。
液相色谱图
多菌灵的液相色谱图见图A.1。
时间/min
多菌灵的液相色谱图
-rKaeerkAca-bzxz.net
GB/T37363.4—2020
GB/T37363.4—2020
液相色谱-质谱/质谱联用条件
附录B
（资料性附录）
液相色谱-质谱/质谱联用法
色谱柱：C反相色谱柱，2.1mm×50mm，2.7μm。流速：0.3mL/min。
柱温：35℃。
进样量：1uL。
雾化气：氮气，纯度≥95%。
干燥气温度：350℃。
干燥气流量：9L/min。
雾化气压力：344737.85Pa(50psi)。碰撞气：高纯氮气，纯度≥99.999%。流动相：流动相A，5mmol/L的乙酸铵水溶液；流动相B，甲醇。梯度洗脱程序：见表B.1。
时间/min
质谱离子源：电喷雾离子源（ESI）。离子化方式：正离子扫描。
毛细管电压：+3000V。
梯度洗脱程序
流动相A/%
监测方式：多反应监测（MRM），监测条件见表B.2表B.2
化合物名称
多菌灵
定量子离子。
母离子m/2
多菌灵的多反应监测条件
子离子m/2
碰撞能量
rKaeerkAca-
流动相B/%
去簇电压
加速电压
多反应监测（MRM）色谱图
多菌灵的多反应监测(MRM)色谱图见图B.1。x10
时间/min
多菌灵的多反应监测（MRM)色谱图-nrKaeerkAca-
GB/T37363.4—2020
小提示：此标准内容仅展示完整标准里的部分截取内容，若需要完整标准请到上方自行免费下载完整标准文档。