本文件界定了中国对虾［Fenneropenaeus chinensis (Osbeck，1765)］的术语和定义，确立了学名与分类，规定了主要形态结构特征、生长与繁殖特性、细胞遗传学特性与分子遗传学特性，描述了相应的检测方法，给出了判定规则。 本文件适用于中国对虾的种质鉴定和检测。

ICS。65.150
CCSB51
中华人民共和国国家标准
19782—2023
代替GB/T
中国对虾
Chineseprawn
2023-12-28发布
国家市场监督管理总局
国家标准化管理委员会
197822005
2024-04-01实施
197822023
可第1部分：标准化文件的结构和起草规则》的规定本文件按照GB/T1.1—2020《标准化工作导则起草。
本文件代替GB/T19782—2005《中国对虾》，与GB/T动外，主要技术变化如下：
更改了“分类地位”（见4.2，2005年版的2.2）；增加了“外部形态”中的图片标引序号（见5.1)：更改了“可量性状”（见5.2，2005年版的3.2)；19782一2005相比，除结构调整和编辑性改删除了“生长与繁殖”中的“亲虾”部分（见2005年版的4.2.1)；删除了“细胞遗传学特性”中的核型公式及染色体组型图（见2005年版的5.1）删除了“生化遗传学特性”（见2005年版的5.2）：删除了“同工酶分析”（见2005年版的6.2)；增加了“分子遗传学特性”（见第8章）；更改了“检测方法”（见第9章，2005年版的第6章）：增加了“判定规则”（见第10章）：更改了细胞遗传学特性检测方法（见附录B）;删除了“同工酶染色液及其所需溶液的配制”（见2005年版的附录C)；增加了“线粒体16SrRNA序列分析”（见附录C)。m)
请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。本文件由中华人民共和国农业农村部提出。本文件由全国水产标准化技术委员会（SAC/TC156)归口。
本文件起草单位：中国水产科学研究院黄海水产研究所。本文件主要起草人：李健、刘萍、何玉英、王琼、王清印。本文件及其所代替文件的历次版本发布情况为：一一2005年首次发布为GB/T
一本次为第一次修订。
19782—2005：
1范围
中国对虾
本文件界定了中国对虾[FenneropenaeusGB/T
19782—2023
chinensis(Osbeck,1765)]的术语和定义，确立了学名与分类，规定了主要形态结构特征、生长与繁殖特性、细胞遗传学特性与分子遗传学特性，描述了相应的检测方法，给出了判定规则。
本文件适用于中国对虾的种质鉴定和检测。规范性引用文件
下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。
GB/T18654.2
GB/T18654.12
GB/T22213
术语和定义
养殖鱼类种质检验第2部分：抽样方法第12部分：染色体组型分析
养殖鱼类种质检验
水产养殖术语
虾类性状测定
22213界定的术语和定义适用于本文件。4学名与分类
4.1学名
中国对虾Fenneropenaeus
4.2分类地位
节肢动物门(Arthropoda)，
属(Fenneropenaeus)。
主要形态结构特征
5.1外部形态
chinensis(Osbeck,1765)。
软甲纲(Malacostraca)，
十足目(Decapoda)，对虾科(Penaeidae)，明对虾身体侧扁，分为头胸部和腹部两部分。额角上缘末端尖细无齿，下缘齿较小。第二触角鳞片末缘超出第一触角柄但不及额角的末端。眼胃脊明显，第四腹节至第六腹节背部中央具有纵脊，尾节末端甚尖，两侧无活动刺。雄虾第一腹节的内肢变形特化成交接器，略呈钟形：雌虾第四步足和第五步足之间基部的腹甲上，有一圆盘状交接器，为纳精囊。外部形态见图1。GB/T
19782—2023
标引序号说明：
第二触角鞭；
2一-第二触角鳞片：
一第一触角：
额角：
额角下齿：
额角上齿：
额角侧脊：
可量性状
胃上制；
眼胃脊：
10——肝刺：
11-—第一腹节：
12——纵：
13—一第六腹节：
14——尾节：
图1外部形态
—泳足：
步足：
第四步足：
第五步足；
纳精囊：
一第一泳足：
一交接器。
第一触角上触鞭长度为头胸甲长度的1.2～1.4倍；下触鞭长度为头胸甲长度的0.6～0.7倍，与额角长度相近。
第二触角触鞭长度为体长的2.3～2.6倍。第六腹节长为高的1.4～1.6倍：尾节长度略短于第6节。5.2.3
眼胃脊占自眼眶边缘至肝刺间距离的3/5。5.3可数性状
额角上缘基部具7齿9齿，下缘具3齿～5齿。鳃的可数性状见表1。
表1鳃的数目
侧/对
关节鲲/对
鳃/对
鳃/对
生长与繁殖特性
6.1生长
19782—2023
蜕皮间断性生长，雌虾的生长速率显著高于雄虾。其体长、体重及生长关系式见附录A。6.2繁殖
6.2.1繁殖期
自然海域中，在10月上旬至11月初雌虾最后一次蜕皮后进行交配，翌年5月至6月，水温升至13℃时开始产卵，为多次产卵，产卵时，精子与卵同时排出并受精。6.2.1.2
始产卵。
人工养殖条件下，在10月下旬至11月初进行交配，翌年3月中旬至5月，水温升至16℃时开怀卵量
3.0X105粒～2.7×10°粒。
受精卵特征
沉性卵，呈浅褐色或灰绿色，
直径0.235mm~0.275
细胞遗传学特性
体细胞染色体数：2n=88。
分子遗传学特性
SrRNA基因碱基参考序列如下（520bp)：线粒体16S
GTCTATATGA
AGGGCCGCGG
AATTGAAGGC
TAATAATTGA
ACGATAAGAC
TTAGTGTAAC
TATAACAAGT
CTAGCATGAT
ACAGCGTAAT
CGATGTTGAA
TGTTCGACCT
TTGTTATATA
TATATTGACC
TTGTATGAAT
ATTTAACTTT
CCTATAAAGC
TTGGTTTTAA
AACTGTTCTT
CCTCTATTAG
CTTCTTTGAG
TTAAGGTATC
TTAAATCCTT
种内K2P遗传距离小于1.5%。
AAGTCTAGCC
GTGCGAAGGT
GGTTGGACAA
TAAGTGAAAA
TTGACAATAA
TTAATATTTG
AAATATTTAA
TGATTAAAAG
AGTCCTCATC
CTTATGATGC
mm。卵膜举起后卵膜径0.330
TGCCCACTGA
AGCATAATCA
AAAGTGAGCT
GGCTTAAATG
TTTAATTATA
TTACGTTGGG
TAACAAATAT
ATTAAGTTAC
GACAAGAAGG
AGCAGTTGTA
TTTAGTTTAA
TTAGTCTTTT
GTCTCAATTA
AATTAAGGGG
CTATCAATTG
GCGACGGGAA
AATTGGAAAA
TTTAGGGATA
TTTGCGACCT
AAGGAAGGTC
19782—2023
检测方法
9.1抽样
按GB/T18654.2
的规定执行。
主要形态结构特征
按SC/T1102
的规定执行。
生长与繁殖特性
9.3.1生长
按SC/T1102
繁殖期
的规定执行。
查询捕捞或养殖记录
3怀卵量
解剖雌虾，将整个卵巢取出，揉碎溶于海水中，经稀释后取一定体积在显微镜下统计卵的数量，计算卵的浓度，进而计算怀卵量，测3次取平均值9.3.4
受精卵特征
在显微镜下观察。
细胞遗传学特性
按附录B的规定执行。
分子遗传学特性
按附录C的规定执行。
判定规则
当检测结果符合第5章和第7章的要求，可判定该种质时，按第5章和第7章的要求判定。10.2
2当出现下列情况之一时，需增加第6章和第8章检测内容，依据检测结果进行辅助判定：a)
第5章和第7章的项目无法进行检测或准确判定时：第三方提出要求时。
附录A
（资料性）
中国对虾体长、体重及生长关系式GB/T19782—2023
雌性、雄性中国对虾在自然海区中的体长与体重关系式分别以公式（A，1）和公式（A.2)表示。W=11.0×10-*
W=11.3x10-6
式中：
体重，单位为克(g);
L体长，单位为毫米(mm）。
L3.004+(R2=0.999)
L 2.9987( R0.998)
雌性、雄性中国对虾在自然海区的体长生长关系式分别以公式（A.3）和公式（A.4)表示。A.2
L,=240.95[1-
L,=184.79[1-
式中：
日龄，单位为天(d);
e-0.010 2(-43.59)(R 2=0.998)e-0.015(-45.11)I(R 3=0.975)
L,一一t日龄时的体长，单位为毫米（mm）。 (A. 3)
. (A. 4)
GB/T19782—2023
B.1吉姆萨(Giemsa）染色液的配制B.1.1Giemsa染色液母液
附录B
(规范性)
染色体的检测
称取0.5gGiemsa粉，量取甘油33mL，在研钵中先用少量甘油与Giemsa粉混合，研磨至无颗粒时再将剩余甘油加入，在56℃条件下温浴2h后，再加入33mL甲醇，并混匀。保存于棕色瓶中备用。磷酸缓冲液(0.2mol/L,pH7.2)
A液(0.2mol/L,Na2HPO4)：取36.1g含1个结晶水的磷酸氢二钠(Na2HPO4H2O)于1000mL的蒸馏水中：或取71.63g含2个结晶水的磷酸氢二钠（Na2HPO-2H2O)，容于
mL的蒸馏水中。
B.1.2.2B液（0.2mo1/L,NalzPOa)：取27.6g含1个结晶水的磷酸二氢钠（NaH,PO4·H20)1000mL的蒸馏水中：或取31.21g含2个结晶水的磷酸二氢钠(NaH2PO2H2O)mL
的蒸馏水中。
B.1.2.3取A液720mL,B液28mL,两者混合即为pH7.2的磷酸缓冲液。B.1.3免费标准下载网bzxz
Giemsa工作液
取100mL的磷酸缓冲液，加入3mLGiemsa染色母液。B.2
染色体的制备
中国对虾胚胎或幼体或雄性成体性腺组织用0.02%秋水仙素溶液浸泡60min。将样品移入0.7%的氯化钾溶液中低渗30min。定
定容于
定容于1000
B.2.3去低渗液，缓慢加入新配制的卡诺氏（Carnoys）固定液（3份甲醇加1份冰乙酸）固定15min20min，反复2次
B.2.4将样品滴到冰冻的载玻片上，室温下干燥。B.2.5Giemsa工作液染色15min。B.3
染色体的计数
按GB/T18654.12
的规定执行。
总DNA提取
附录C
(规范性）
线粒体16SrRNA序列分析
19782—2023
取肌肉组织研磨，用10%蛋白酶K消化后，按照标准的酚-三氯甲烷抽提法或者使用试剂盒进行DNA的提取。
C.2PCR扩增
扩增引物序列为：
L2510:5'-CGCCTGTTTAACAAAAACAT-3'；H3059:5'-CCGGTCTGAACTCAGATCATGT-3'。反应体系为25μL，其中包括：10×PCRBuffer2.5μL,dNTP(2.5mmol/L)2μL,TaqDNA聚合酶（5U/uL)0.4
μL,上下游引物（10mmol/L）各1L，模板DNA1μL,补足灭菌双蒸水至终体积25μL。每组PCR均设阴性对照用来检测是否存在污染，PCR扩增反应程序如下：94C预变性2min,94℃变性30s50℃退火30s,722℃延伸30S，循环35次，72℃后延伸5min。所有PCR均在热循环仪上完成。
目标区域测序
PCR扩增产物使用1.5%琼脂糖凝胶电泳于紫外灯下检测后，进行测序，用于测序的引物序列与PCR扩增使用的引物序列相同。
遗传距离分析
利用Kimura两参数模型（Kimura距离。
2-parameter,K2P)计算检测样品的序列与参考序列的遗传bzxz.net
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