本标准给出了尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)的主要形态构造特征、生长与繁殖、遗传学特性以及检测方法。本标准适用于尼罗罗非鱼的种质鉴定。 SC 1027-1998 尼罗罗非鱼 SC1027-1998 标准下载解压密码：www.bzxz.net

SC1027-1998
尼罗罗非鱼原产非洲，70年代后期引进我国。为了鉴定尼罗罗非鱼，保护和保存尼罗罗非鱼优良的性状及种质，防止苗种生产过程中混杂和退化，并开展有效的种质监测，特制定本标准。本标准主要是“八五”科技攻关成果，并吸取了前人的有关资料。本标准的附录 A、附录B是标准的附录。本标准的附录C是提示的附录。
本标准由农业部渔业局提出。
本标准由全国水产标准化技术委员会淡水养殖分技术委员会归口。本标准起草单位：上海水产大学、中国水产科学研究院长江水产研究所。本标准主要起草人：李思发、赵金良、蔡完其、周碧云、吕国庆、范兆廷、徐忠法。258
中华人民共和国水产行业标准
尼罗罗非
Nile tilapia
SC 1027 - 1998
本标准给出了尼罗罗非鱼（Oreochromis niloticus）的主要形态构造特征、生长与繁殖、遗传学特性，以及检测方法。
本标准适用于尼罗罗非鱼的种质鉴定。2名称与分类
2.1学名
尼罗罗非鱼（Oreochromis niloticus)。2.2分类位置
属鲈形自（Perciformes）、丽鱼科（Cichlidae）、罗非鱼属（Oreochromis）。3主要形态构造特征
3.1外部形态特征
3.1.1外形
体高，侧扁。头部平直或稍隆起。体被栉鳞。侧线断折，呈不连续的两行。尾鳍末端为钝圆形，不分叉。
成鱼身体两侧有与体轴垂直的黑带9条。背鳍、臀鳍及尾鳍上均有黑白相间的斑点，在背、臀鳍上呈斜向排列，尾鳍上的斑点呈线条状垂直排列，成鱼在17条以上。性成熟雄鱼的尾鳍、臀鳍及背鳍边缘呈红色。背鳍边缘黑色。幼鱼阶段背鳍有一个大而显著的斑点，以后逐渐消失。尼罗罗非鱼的外部形态见图1。
图1尼罗罗非鱼外形
3.1.2可数性状
3.1.2.1背鳍鳍式:DXV~XVI10~14。中华人民共和国农业部1998-03-23批准1998-09-01实施
臂鳍鳍式：AⅢ·8～11。
3. 1. 2. 2
3.1.2.3上侧线鳞数：13～~26。3.1.2.4下侧线鳞数：13~20。
3.1.2.5第—鳃弓外侧鳃耙数：27～31。3. 1. 2. 6
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下咽齿：左右下咽骨愈合上有浓密的葩齿。3.1.3可量性状
对于体长10.0~17.8cm，体重26.8～218.3g的个体，实测性状比例值见表1。表1实测性状比例值免费标准bzxz.net
全长/体长
体长/体高
体长/头长
头长/吻长
1.235±0.0382.407±0.159
3.202±0.2093.077±0.710
3.2内部构造特征
无管，有腔，二室，前室较后室大。3.2.2脊椎骨
脊椎骨总数为31~~33。
3.2.3腹膜
浅黑色。
4生长与繁殖
4.１生长
头长/眼径
头长/眼间距
体长/尾柄长
4.263±0.4382.182±0.34810.020±1.349尾柄长/尾柄高
0, 679±0.079
不同年龄组尼罗罗非鱼在池养条件下体长、体重的实测值见表2。与表2对应的不同年龄组的鱼体长、体重生长关系式见附录C(提示的附录)。表2池养条件下尼罗罗非鱼体长、体重实测值年龄\，龄
实测体长，cm
实测体重·g
1）年龄根据实际观察养殖记录而确定。4.2繁殖
12.5±0.6
74.3±11.8
4.2.1性成熟年龄：在适温条件下，雌、雄鱼初次性成熟约为4月龄。4.2.2性腺一年成熟多次，分批产卵，由雌鱼口孵。4.2.3怀卵量：初次性成熟的个体平均怀卵量见表3。表3初次性成熟的个体平均怀卵量年龄，月
体重，g
绝对怀量,粒
相对怀对量，粒/g
5遗传学特性
5.1细胞遗传学特性
5.1.1染色体数
17.2±1.6
192.1±57.1
141.8±54.9
1335.7±456.4
10.5±5.1
体细胞染色体2倍数，2n=44。
5.1.2核型
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亚中部着丝粒染色体（sm组）3对；亚端部着丝粒染色体（st组)12对；端部染色体(t组）7对，没有中部着丝粒染色体(m组）,染色体臂数(NF)50(见图2)。n
5.2生化遗传学特性
5.2.1肌肉中乳酸脱氢酶(LDH)同工酶入
尼罗罗非鱼染色体组型
5.2.1.1肌肉中乳酸脱氢酶(LDH)同工酶酶谱见图3。0
图 3尼罗罗非鱼肌肉 LDH同工酶电泳酶谱5.2.1.2乳酸脱氢酶(LDH)同工酶酶带扫描图见图 4。LDH
图 4尼罗罗非鱼肌肉LDH同工酶酶带扫描图5.2.1.3群体变异范围
尼罗罗非鱼（我国1978年引进的群体）的多态座位比例为11.8%，平均杂合度为0.040。6检测方法
6.1繁殖力的测定
在繁殖季节，将产卵前性腺发育成熟的尼罗罗非鱼亲鱼进行活体解剖，用电子天平称取体重，空壳重和性腺重（精确到0.01g），同时称取1.0g卵样品2份，在解剖镜下分别计数，计算每克卵的平均卵261
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粒数，卵巢中所含的全部卵粒数即为绝对怀卵量，单位体重(g)所含的卵粒数为相对怀卵量。6.2染色体的检测
6.2.1标本制备
采用体内注射植物血凝聚素(PHA）,取肾细胞悬液滴片，空气干燥制片，吉姆萨(Giemsa)染色。吉姆萨染色液的配制见附录A（标准的附录）。6.2.2测定染色体数
在显微镜油镜下观察，计数100个以上清晰、分散良好的中期分裂相的染色体数目，测定染色体数。6.2.3组型分析
选择部分最佳中期分裂相，进行显微摄影，按放大照片剪贴配组，进行染色体组型分析。染色体的形态类别，按下列规定划分，即臂比1.0～1.7为中部着丝粒染色体（m组）；1.7～3.0为亚中部着丝粒染色体(sm组）;3.0～7.0为亚端部着丝粒染色体(st组）;7.0~～αc为端部着丝粒染色体(t组）。6.3乳酸脱氢酶（LDH)同工酶酶谱6.3.1样品的采集与保存
先剪断腹侧主动脉放血，活体解剖，取背部白肌，放人编号的小塑料袋中，液氮中保存。运回实验室后，置于一25C冰箱中保存。
6.3.2样品制备
样品加30%辅酶I液勾浆，低温离心，至上清液澄清。整个制备过程均在低温下操作。6.3.3电泳分离
用水平平板电泳仪及4.0%聚丙烯胺凝胶电泳分离。加样前，预电泳：50mA，30min。加样后，前电泳：25mA，10min；正式电泳：275V,100min。电泳结束后，放人预先配好并在37℃恒温箱中保温的同工酶染色液中染色。同工酶染色液的配制见附录B(标准的附录）。6.3.4扫描测定
用激光扫描仪对电泳图谱进行扫描。262
A7Giemsa 染色母液的配制
SC 1027 - 1998
附录A
(标准的附录）
吉姆萨（Giemsa）染色液配制
称取0.5gGiemsa粉，量取甘油33mL，在研钵中先用少量甘油与Giemsa粉混合，研磨至无颗粒时再将剩余甘油加人，在56℃条件下保温2h后，再加33mL甲醇，保存于棕色瓶内。A2磷酸缓冲液(0.2mol/L,pH7.2)的配制磷酸缓冲液由A液和B液按比例混合而成。A2.1A液(0.2mol/I,Na2HPO.)配制：取36.61名含一个结晶水的磷酸氢二钠(NazHPO.·H,O)定容于1000mL蒸馏水中，或取71.64g含两个结晶水的磷酸氢二钠（Na2HPO·H2O)定容于1000mL蒸馏水中，即成。
A2.2B液(0.2mol/L,NaHzPO,)配制：取27.6g含一个结晶水的磷酸二氢钠(NaHzPO.·H,O)定容于1000mL蒸馏水中，或取31.21g含两个结晶水的磷酸二氢钠（NaH,PO4·2H,O)定容于1000mL蒸馏水中,即成。
A2.3取A液720mL，加上B液28.0mL，混合即成所需的磷酸缓冲液。A3Giemsa 工作染色液的配制
取100mL磷酸缓冲液，加人3mLGiemsa染色母液即成。附录B
(标准的附录）
同工酶染色液的配制
B1三羟甲基氨基甲烷-盐酸(Tris-HCI)染色缓冲液(1. 5 mol/L)的配制取三羟甲基氨基甲烷181.71g溶于900mL蒸馏水中,用盐酸调节至pH9.5,再用蒸馏水稀释至1 000 mL.
B2氟化硝基四氨唑蓝(NBT)液(mg/mL)的配制取250mg氯化硝基四氮唑蓝溶于250mL蒸馏水中。B3乳酸钠溶液(.1 mol/L)的配制取203.76mL乳酸，加入700mL蒸馏水混合，用50%氢氧化钠溶液调节至pH7.0，再用蒸馏水稀释至1000mL。
B4 同工酶染色液的配制
所需同工酶染色液按表B1配制。263
Tris-HCI染色缓冲液
辅酶1
C1鱼种阶段按式(C1)计算：
式中W—-鱼体体重，g;
L---鱼体鱼长，cm。
食用商品鱼阶段按式(C2)计算：C2
C3亲鱼阶段按式(C3)、式(C4)计算：雌鱼：
雄鱼：
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同工酶染色液配方
盼嗪甲酯硫酸盐
附录C
（提示的附录）
体长、体重生长关系式
W = 0. 031 4 × L3. 079 7
W = 0. 0475X L2. 912 8
W= 0. 038 5 XL2. 961 5
W= 0. 029 8XL3. 064 4
乳酸钠溶液
蒸馏水
（C1）
（C2）
(C4）)
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