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基本信息

标准号: SN/T 4877.2-2017

中文名称:基因条形码筛查方法第2部分:检疫性黄单胞菌

标准类别:商检行业标准(SN)

标准状态:现行

出版语种:简体中文

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相关标签: 基因 条形码 筛查 方法 检疫 单胞菌

标准分类号

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出版信息

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标准简介

SN/T 4877.2-2017.DNA barcoding screening method-Part 2 :Quarantine Xanthomonas spp.
1范围
SN/T 4877.2规定了检疫性黄单胞菌DNA条形码筛查中序列的扩增、分析及结果判定等。
SN/T 4877.2适用于检疫性黄单胞菌的筛查。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
SN/T 1400甘蔗流胶病菌检疫鉴定方法
SN/T2372水稻白叶枯病菌、水稻细菌性条斑病菌的检测方法
SN/T 3278风信子黄腐病菌检疫鉴定方法
SN/T 3431香 蕉坏死条纹病菌检疫鉴定方法
SN/T4073芒果细菌性黑斑病菌快速检测方法
3术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
3.1DNA条形码
生物体内能够代表该物种的,标准的、有足够变异的、易扩增且相对较短的DNA片段。
3.2 16S rRNA基因
原核生物核糖体30S小亚基的组成部分,16SrRNA基因序列具有高度的保守性和特异性,是细菌种间鉴定的重要依据。
3.3 cpn60基因
编码伴侣蛋白60(cpn60,又叫热休克蛋白60/ Hsp60)的基因,为单拷贝基因,广泛存在于细菌及真核生物细胞中,是系统进化分析的有效分子标记。

标准内容

中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 SN/T4877.2--2017 基因条形码筛查方法 第2部分:检疫性黄单胞菌 (DNA barcoding screening method Part 2: Quarantine Xanthomonas spp) 2017-07-21发布 2018-03-01实施 中华人民共和国 国家质量监督检验检疫总局 前言 SN/T4877《基因条形码筛查方法》共分为3个部分:第1部分:检疫性棒形杆菌;第2部分:检疫性黄单胞菌;第3部分:检疫性植原体。 本部分为SN/T4877的第2部分。 本部分按照GB/T1.1-2009给出的规则起草SN/T4877.2—2017。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任。本部分由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。 本部分起草单位:中国检验检疫科学研究院、中华人民共和国深圳出入境检验检疫局、中华人民共和国云浮出入境检验检疫局、中华人民共和国满洲里出入境检验检疫局、中国农科院生物技术研究所。 本部分主要起草人:田茜、冯建军、何旭诺、刘玮琦、赵文军、李为民。 1 范围 SN/T4877的本部分规定了检疫性黄单胞菌DNA条形码筛查中序列的扩增、分析及结果判定等。本部分适用于检疫性黄单胞菌的筛查。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 SN/T1400 甘蔗流胶病菌检疫鉴定方法 SN/T2372 水稻白叶枯病菌、水稻细菌性条斑病菌的检测方法 SN/T3278 香蕉坏死条纹病菌检疫鉴定方法 SN/T3431 芒果细菌性黑斑病菌快速检测方法 SN/T4073 风信子黄腐病菌检疫鉴定方法 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 DNA条形码:生物体内能够代表该物种的,标准的、有足够变异的、易扩增且相对较短的DNA片段。 3.2 16S rRNA基因:原核生物核糖体30S小亚基的组成部分,16S rRNA基因序列具有高度的保守性和特异性,是细菌种间鉴定的重要依据。 3.3 cpn60基因:编码伴侣蛋白60(cpn60,又叫热休克蛋白60/Hsp60)的基因,为单拷贝基因,广泛存在于细菌及真核生物细胞中,是系统进化分析的有效分子标记。 4 黄单胞菌属基本信息 学名:Xanthomonas 分类地位:细菌界(Bacteria),变形菌门(Proteobacteria),$gamma$-变形菌纲(Gammaproteobacteria),黄单胞菌目(Xanthomonodales),黄单胞菌科(Xanthomonodaceae),黄单胞菌属(Xanthomonas)。 黄单胞菌属是最重要的植物病原细菌属,该属目前包括了14个进境植物检疫性有害生物: 1. 甘蔗白色条纹病菌(Xanthomonas albilineans); 2. 香蕉坏死条纹病菌(Xanthomonas arboricola pv. celebensis); 3. 胡椒叶斑病菌(Xanthomonas axonopodis pv. betlicola); 4. 柑橘溃疡病菌(Xanthomonas axonopodis pv. citri); 5. 木薯细菌性萎蔗病菌(Xanthomonas axonopodis pv. manihotis); 6. 甘蔗流胶病菌(Xanthomonas axonopodis pv. asculorum); 7. 芒果黑斑病菌(Xanthomonas campestris pv. mangiferaeindicae); 8. 香蕉细菌性菱病菌(Xanthomonas campestris pv. musacearum); 9. 木薯细菌性叶斑病菌(Xanthomonas cassavae); 10. 草莓角斑病菌(Xanthomonas fragariae); 11. 风信子黄腐病菌(Xanthomonas hyacinthi); 12. 水稻白叶枯病菌(Xanthomonas oryzae pv. oryzae); 13. 水稻细菌性条斑病菌(Xanthomonas oryzae pv. oryzicola); 14. 杨树细菌性溃疡病菌(Xanthomonas populi)。 5 方法原理 根据细菌核糖体16S rRNA基因序列分析确定目标细菌是否为黄单胞菌,然后根据cpn60基因序列分析对目标细菌进行筛查。 6 仪器设备和主要试剂 6.1 仪器设备 生物安全柜、高压灭菌锅、生化培养箱、离心机、微量分光光度仪、PCR仪、电泳设备、凝胶成像系统、冰箱等。 6.2 主要试剂 细菌DNA提取试剂盒、PCRPremix、超纯水、DNAmarker。 7 筛查鉴定方法 7.1 DNA制备 对细菌进行液体培养或平板培养,利用商品化细菌DNA提取试剂盒制备细菌总DNA,测定DNA浓度及纯度后,保存于-20℃冰箱备用。 7.2 16S rRNA基因序列扩增测序 利用通用引物进行16S rRNA基因扩增测序(具体步骤见附录A),将序列在Genbank数据库或中国检疫性有害生物DNA条形码数据库中进行比对,若与数据库中黄单胞菌16S rRNA基因序列相似性大于97%,则进行7.3操作。 7.3 cpn60基因序列扩增 利用通用引物进行cpn60基因序列扩增测序(具体步骤见附录B)。 7.4 序列分析 将cpn60基因序列在中国检疫性有害生物DNA条形码数据库中进行比对分析,采用邻接法构建基于cpn60基因序列的NJ树。 8 结果判定 16S rRNA基因序列长度大于1200bp,在Genbank数据库或中国检疫性有害生物DNA条形码数据库中进行比对分析,若与数据库中黄单胞菌16S rRNA基因序列相似性大于97%,则判定该菌为黄单胞菌。 cpn60基因序列长度大于540bp,在中国检疫性有害生物DNA条形码数据库中进行比对分析,若与数据库中某黄单胞菌的cpn60基因序列同源性大于98%,且在NJ树中聚在同一分支,则初步判定为该黄单胞菌。 若判定为目标检疫性黄单胞菌,有相应标准的需要根据标准方法(SN/T3431或SN/T1400或SN/T4073或SN/T3278或SN/T2372)进行最终鉴定,无相应标准的需要按照常规细菌鉴定方法进行最终鉴定。 9 样品保存 9.1 样品保存 分离并最终鉴定为检疫性目标细菌的菌株应转接到试管斜面上,经登记和经手人签字后置于4℃低温冰箱中保存,定期(30天~60天)转接,必要时冻干后长期保存。 9.2 结果记录与资料保存 完整的实验记录包括:样品的来源、种类、时间,实验的时间、地点、方法和结果等,并要有实验人员和审核人员签字。PCR凝胶电泳检测需有电泳结果照片,序列需要保存电子文件。 附录A(规范性附录) A.1 引物序列 16S rRNA基因扩增程序 16sF-LYP-3: 5'-CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGACGCGTAGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3 16sR-LYP-3: 5'-AGCGGATAACAATTTCACACAGGAGACGGGCGGTGTGTRCA-3 注:下划线部分为测序引物,全部序列都要合成(R=G或A)。 A.2 PCR体系及扩增程序 推荐用50μL体系,采用商品化的PCRPremix进行PCR扩增,反应体系中引物浓度为200nmol/L,DNA模板量为10ng~100ng。 PCR反应程序:94℃5min; 94℃1min,60℃1min,72℃1min,35个循环; 72℃10min。该引物为通用引物,每次做PCR应做空白对照,以确认是否污染。 A.3 电泳及测序 取5μL PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,PCR产物大小:约1200bp左右。测序引物为M13-47及RV-M(或M13-48)。 附录B(规范性附录) B.1 引物序列 cpn60基因扩增程序 先用H1594/H1595扩增,若效果不理想,再利用H729/H730扩增。 H1594: 5'-CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGACGACGTCGCCGGTGACGGCACCACCAC-3 H1595: 5'-AGCGGATAACAATTTCACACAGGACGACGGTCGCCGAAGCCCGGGGCCTT-3 H729: 5'-CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGACGAII1IGCIGGIGAYGGIACIACIAC-3 H730: 5'-AGCGGATAACAATTTCACACAGGAYKIYKITCICCRAAICCIGGIGC-3 注:下划线部分为测序引物,全部序列都要合成(I=次黄嘌呤,Y=C或T,R=G或A,K=G或T)。 B.2 PCR体系及扩增程序 推荐用50μL体系,采用商品化的PCRPremix进行PCR扩增,反应体系中引物浓度为200nmol/L,DNA模板量为10ng~100ng。 PCR反应程序: H1594/H1595: 94℃5min; 94℃30s, 57℃30s, 72℃45s, 35个循环; 72℃10min。 H729/H730: 94℃5min; 94℃30s, 50℃30s, 72℃45s, 35个循环; 72℃10min。 该引物为通用引物,每次做PCR应做空白对照,以确认是否污染。

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