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SN/T 4235-2015

基本信息

标准号: SN/T 4235-2015

中文名称:猪戊型肝炎检疫技术规范

标准类别:商检行业标准(SN)

标准状态:现行

出版语种:简体中文

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相关标签: 肝炎 检疫 技术规范

标准分类号

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出版信息

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标准简介

SN/T 4235-2015.Quarantine protocol for swine hepatitis E.
1范围
SN/T 4235规定了猪戊型肝炎的临床诊断、酶联免疫吸附试验、实时荧光聚合酶链式反应检测技术。
SN/T 4235适用于猪戊型肝炎的诊断和流行病学调查。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T 18088出 人境动物检疫采样
GB/T19489实验室生物安全通用要求
3缩略语
下列缩略语适用于本文件。
HEV :戊型肝炎病毒
BSA:牛血清白蛋白
HRP:辣根过氧化物酶
OD值:光密度值
ELISA:酶联免疫吸附试验
荧光RT-PCR:实时荧光聚合酶链式反应
4试剂
4.1 HEV 阳性对照血清。
4.2 HEV阴性对照血清。
4.3 HEV 抗原。
4.4 牛血清白蛋白。
4.5 HRP 标记的兔抗猪IgG。
4.60.01 mol/L PBS缓冲液。
4.7抗原稀释液(见附录 A)。
4.8洗涤液(见附录 A)。
4.9吐温-20。
4.10封闭液(见附录A)。
4.11显色剂(见附录A)
4.12终 止液(见附录A)。
4.13 TRIZOL。
4.14 三氯甲烷。

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标准内容

中华人民共和国出入境检验检疫行业标准SN/T4235—2015
猪戊型肝炎检疫技术规范
QuarantineprotocolforswinehepatitisE2015-05-26发布
刮涂质真件
中华人民共和国
国家质量监督检验检疫总局
2016-01-01实施
本标准按照GB/T1.1一2009给出的规则起草。本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。SN/T4235—2015
本标准起草单位:中华人民共和国广东出人境检验检疫局、中华人民共和国上海出人境检验检疫局、中华人民共和国北京出人境检验检疫局、上海市动物疫病预防控制中心本标准主要起草人:鱼海琼、张强、乔彩霞、罗长保、赵吟、蔡先全、刘佩红、周锦萍、李树清、吴晓薇。I
1范围
猪戊型肝炎检疫技术规范
SN/T4235—2015
本标准规定了猪戊型肝炎的临床诊断、酶联免疫吸附试验、实时荧光聚合酶链式反应检测技术。本标准适用于猪戊型肝炎的诊断和流行病学调查。2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注口期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T18088出人境动物检疫采样
GB/T19489
3缩略语
实验室生物安全通用要求
下列缩略语适用于本文件。
HEV:戊型肝炎病毒
BSA:牛血清白蛋白
HRP:辣根过氧化物酶
OD值:光密度值
ELISA:酶联免疫吸附试验
荧光RT-PCR:实时荧光聚合酶链式反应4试剂
HEV阳性对照血清。
HEV阴性对照血清。
HEV抗原。
牛血清白蛋白。
HRP标记的免抗猪IgG。
0.01mol/LPBS缓冲液。
抗原稀释液(见附录A)。
洗涤液(见附录A)。
吐温-20。
封闭液(见附录A)。
显色剂(见附录A)。
终止液(见附录A)。
TRIZOL。
三氯甲烷。
SN/T4235—2015
异丙醇:一20℃预冷。
0.1%DEPC水。
75%乙醇。
RNA酶抑制剂(40U/μL)。
TaqDNA聚合酶(5U/μL)及相应10X缓冲液。M-MLV反转录酶(200U/μL)及相应5X反转录反应缓冲液。dNTP(2.5mmol/L)。
MgClz(25mmol/L)。
5设备
二级生物安全柜。
高压灭菌锅。
微量移液器。
5.4酶标仪。
5洗板机。
高速冷冻离心机。
荧光PCR仪。
临床诊断
流行病学
戊型肝炎的流行病学特点与甲肝相似,参见B.1。6.2
临床症状及病理变化
猪自身感染HEV临床症状并不明显,参见B.2。6.3初步诊断
根据临床症状、病理变化和流行病学可以作出初步判断,进一步诊断应采集样品进行实验室检测。该病原属人畜共患病原,涉及病原的检测应在二级生物安全实验室进行,样品保存和废弃物处理应按照GB/T19489生物安全要求进行。
实验室检测
酶联免疫吸附试验(间接ELISA)7.1
7.1.1原理
96孔微量板的奇数列包被有戊型肝炎病毒衣壳蛋白重组抗原,偶数列则未包被。检测样品和对照样品加入到反应孔内,每个样至少加平行的两孔(一个奇数孔和一个偶数孔)。如果血清中存在特异性抗体,会形成抗原-抗体复合物。洗板后,加人HRP标记的酶结合物,该酶标结合物与HEV抗原抗体复合物结合,形成抗原-抗体-酶复合物。洗去过剩的酶结合物,加人底物液,样品中特异性抗体的数量就会在奇数、偶数孔间出现颜色差异:如果存在抗体,加人终止液后蓝色液体会变成黄色;如果没有抗体,则无色。
7.1.2样品采集制备
SN/T4235—2015
按照GB/T18088,无菌操作采集动物血,每头不少于5mL,自然凝固后无菌分离血清,分装,加盖密封后冷藏保存。样品1周内检测可存放于2℃~8℃,超过1周应置于一20℃。7.1.3操作步骤
7.1.3.1使用前将所有试剂平衡至室温(21土5)℃,将反应板/条做好标记,阴性对照孔A1、A2、B1、B2,阳性对照孔C1、C2、D1、D2。7.1.3.2用多通道移液器加190uL样品稀释液至所有样品孔。7.1.3.3加10μL阴性对照至A1、A2、B1、B2孔加10μL阳性对照至C1、C2、D1、D2孔;加10μL待检血清到其他剩余的孔,各加两孔,微量振荡器混匀。密封微量反应板,室温(21土5)℃反应(45士4)min。7.1.3.4
用300μL/孔洗液洗板3次,最后一次拍干以去除残留洗液。将酶标结合物用酶稀释液10倍稀释后,加100μL至所有样品孔,微量振荡器混匀。密封微量反应板,室温(21土5)℃反应(30士3)min。同上洗板。
加100μL底物液至所有样品孔。7.1.3.10
密封微量反应板,室温(21士5)℃避光反应(15士2)min至颜色变化。加100μL终止液至所有孔终止反应,终止液添加顺序与底物溶液添加顺序相同。振荡混匀,用酶标仪在450nm条件下读取OD值,15min内完成结果读取。7.1.4
结果分析
数据计算
依据式(1)分别计算每一份样品的净OD值:净OD值=OD值奇数孔一OD值偶数孔式中:
净OD值—被检样品的真实光密度值。OD值奇数孔——奇数列微孔的光密度值。OD值偶数孔——偶数列微孔的光密度值。7.1.4.2有效性判断
当下列条件成立时,本试验有效:阳性对照平均净OD值应大于0.350。a)
b)阳性对照平均净OD值与阴性对照平均净OD值比值应大于3。7.1.4.3结果判定
根据式(2)计算每一份样品的S/P值:S/P=净ODsample/净ODpc
式中:
净ODsample
挣ODpc
被检样品与阳性对照真实光密度值的比值。被检样品微孔真实的光密度值。阳性对照微孔真实的光密度值。....(1)
·(2)
SN/T4235—2015
判定如下:
当S/P小于或等于0.6时判为阴性;a)
当S/P大于或等于0.7时判为阳性;b)
当S/P小于0.7且大于0.6时判为可疑。7.2酶联免疫吸附试验(双抗原夹心ELISA)7.2.1原理
以HEV的ORF2和ORF3融合抗原包被微孔反应板,加人待检样品,再加人HRP标记的HEV保守抗原片段。如果样品中含有HEV抗体,则能与包被在反应板上的融合抗原和酶标HEV保守抗原片段结合,形成“抗原-抗体-抗原-HRP复合物”,加入底物产生显色反应,反之则无显色反应。
7.2.2样品采集制备
同7.1.2。
7.2.3包被反应板的制备
7.2.3.1用抗原稀释液(见A.1)稀释HEVORF2和ORF3融合抗原至工作浓度1.0μg/mL,取96孔2℃~8℃过夜。使用前弃去板中包被液,加洗涤液(见A.2)洗板微量反应板,每孔加人100μL,封板2
3次,每次1min,拍干。
7.2.3.2每孔加人封闭液150μL,封板后37℃温育60min。7.2.3.3将反应板中封闭液(见A.3)吸干,用铝箔纸密封,2℃~8℃保存备用。7.2.4此内容来自标准下载网
正式试验
每孔加入50μL待检血清;设阴、阳性对照各2孔,每孔加人对照血清各50μL。每孔加入HRP标记的免抗猪IgG
50.振荡混
℃温育60min。
匀,封板,置37
弃去孔内液体,用洗涤液注满各重复5次后拍干
孔,甩干
每孔加显色剂(见A.4)100
每孔加终止液(见A.5)50
荡混匀,封板,置37℃温育15min。取波长450nm(使用双波长酶标仪时,参考波长6300nm),读取各孔OD值。
结果判定
有效性判断
阳性对照OD值大于等于0.8,阴性对照OD值小于等于0.15时,检测有效。7.2.5.2
判定标准
根据式(3)计算临界值:
临界值=0.25十阴性对照平均OD值式中:
临界值
阴性对照平均OD值
判定标准如下:
阴、阳性结果判定的界点数值。阴性对照微孔光密度值的平均值。a)待检样品OD值大于等于临界值,则判为阳性。b)待检样品OD值小于临界值,则判为阴性。4
7.3荧光RT-PCR检测方法
7.3.1原理
SN/T4235—2015
采用TaqMan方法,针对HEV四个主要基因型毒株均高度保守的ORF2区域,设计合成一对引物和一条特异性的荧光素双标记探针。探针5'端标记FAM荧光素为报告荧光基团(用R表示),3'端标记TAMRA荧光素为淬灭荧光基团(用Q表示),它在近距离内能吸收5端荧光基团发出的荧光信号。PCR反应进人退火阶段时,引物和探针同时与目的基因片段结合,此时探针上R基团发出的荧光信号被Q基团所吸收,仪器检测不到荧光信号;而反应进行到延伸阶段时,Taq酶的5'-→3外切核酸酶功能将探针降解,探针上的R基团游离出来.所发出的荧光不再为Q基团所吸收而被检测仪所接收。随着PCR反应的循环进行,PCR产物与荧光信号的增长呈现对应关系。7.3.2引物和探针
引物和探针针对戊型肝炎病毒ORF2编码区高度保守序列设计,可由生物公司合成,纯度为HPLC级,用DEPC溶解至10μmol/L后,保存于一20℃备用,引物、探针的名称、序列及位置参见表c.1。
7.3.3质控物质
7.3.3.1阳性对照
克隆HEVORF2基因片段,经体外转录后制备cRNA溶液,用做阳性对照;或HEV阳性猪肝脏,经研磨匀浆后,1000r/min离心5min,上清经1%福尔马林37℃24h灭活后,用做阳性对照。7.3.3.2阴性对照
HEV阴性猪肝脏,经匀浆后,1000r/min离心5min,取上清用做阴性对照。
空白对照
DEPC水溶液(见C.2)。
样品的采集制备
猪肝样品
用无菌剪刀和镊子剪取待检样品1.0g于研钵中充分研磨,再加5.0mLPBS混勾,然后将组织悬液转入无菌离心管中,编号备用。7.3.4.2猪胆汁
用无菌注射器直接吸取500μL至无菌离心管中,编号备用。7.3.4.3猪粪便
取0.1g固体粪便标本或0.1mL液体粪便标本至1.5mL无菌离心管中,再加人1mLPBS,置于漩涡振荡器混匀,编号备用。
7.3.4.4血清
用无菌注射器直接吸取500μL至无菌离心管中,编号备用。5
SN/T4235—2015
7.3.4.5存放与运送
采集或处理的样品在2℃~8℃条件下保存不超过24h;若需长期保存,应放置一70℃冰箱,但应避免反复冻融(最多冻融3次)。采集的样品密封后,采用保温壶或保温桶加冰密封,尽快运送到实验室。
7.3.5样品核酸的提取
7.3.5.1取n个1.5mL灭菌离心管,其中n为待检样品数、一管阳性对照及一管阴性对照之和,对每个管进行编号标记。
7.3.5.2每管加人600uL裂解液,然后分别加入待测样品、阴性对照和阳性对照各200μL,一份样品换用一个吸头;再加人200μL三氯甲烷,混勾器上振荡混匀5s。于4℃条件下,12000r/min离心15min。
7.3.5.3取与7.3.5.1中相同数量的1.5mL灭菌离心管,加人500μL异丙醇(-20℃预冷),对每个管进行编号。吸取7.3.5.2离心后各管中的上清液转移至相应的管中,上清液至少吸取500μL,注意不要吸出中间层,颠倒混匀。
7.3.5.4于4℃条件下,12000r/min离心15min(离心管开口保持朝离心机转轴方向放置)。轻轻倒去上清液,倒置于吸水纸上,吸干液体,不同样品应在吸水纸不同地方吸干。加人600μL75%乙醇,颠倒洗涤。
7.3.5.5于4℃条件下,12000r/min离心10min(离心管开口保持朝离心机转轴方向放置)。轻轻倒去上清液,倒置于吸水纸上,吸干液体,不同样品应在吸水纸不同地方吸干。7.3.5.64000r/min离心10s,将管壁上的残余液体甩到管底部,用微量加样器尽量将其吸干,一份样品换用一个吸头,吸头不要碰到有沉淀一面,室温干燥3min。不宜过于干燥,以免RNA不溶。7.3.5.7加入11μLDEPC水,轻轻混匀,溶解管壁上的RNA,2000r/min离心5s,冰上保存备用。提取的RNA应在2h内进行RT-PCR扩增或放置于一70℃冰箱,将核酸转移至反应混合物配制区。7.3.6扩增试剂准备与配制
本步骤在反应混合物配制区进行每个测试反应体系需使用15μL荧光RT-PCR反应液,反应液配方见表C.2。根据7.3.5.1中所设定的n值,计算各试剂的使用量,加人适当体积试管中,充分混合均匀后,向每个PCR管中各分装15μL,转移至样品处理区。
7.3.7加样
在样品处理区进行。在7.3.6的PCR管中分别加入制备好的RNA溶液10μL,使总体积达25μL。
盖紧管盖后,500r/min离心30s。7.3.8荧光RT-PCR反应
在检测区进行。将7.3.7中加样后的PCR管放入荧光PCR检测仪内,记录样品摆放顺序,选定FAM检测通道读取检测结果,选择TAMRA作为淬灭基团。设置如下反应参数:a)第一阶段,反转录42℃/30min;b)第二阶段,预变性92℃/3min;第三阶段,92℃/10s,45℃/30s,72℃/1min,5个循环;c)
第四阶段,92℃/10s,60℃/30s,40个循环,荧光收集设置在第四阶段每次循环的退火延伸d)
时进行。
7.3.9结果判定
结果分析条件设定
SN/T4235—2015
阅值设定原则:根据仪器噪声情况进行调整,以阅值线刚好超过阴性对照品扩增曲线的最高点,且相交于阳性对照扩增曲线的指数增长期为准。7.3.9.2
质控标准
阴性对照无Ct值并且无特定扩增曲线。阳性对照的Ct值应≤30,并出现特定的扩增曲线。如阴性对照和阳性对照不满足以上条件,此次实验视为无效。7.3.9.3
结果描述及判定
结果描述及判定如下:
阴性:无Ct值并且无扩增曲线,表明样品中无戊型肝炎病毒,a)
阳性:Ct值≤30,且出现特定的扩增曲线,表示样品中存在戊型肝炎病毒。b)
7.4综合判定
依据7.1或者7.2方法检测获得阳性结果的即可判定为猪戊型肝炎血清抗体阳性;依据7.3方法检测获得阳性结果的可判定为猪戊型肝炎抗原阳性。7
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