标准简介
SN/T 3965-2014.Detection and identification of Erwinia persicina Hao et al.
1范围
SN/T 3965规定了进出境植物检疫中桃色欧文氏菌的检疫鉴定方法。
SN/T 3965适用于可能携带桃色欧文氏菌的水果、种子以及苗木等繁殖材料的检疫和鉴定。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法
SN/T1809进出境植物种子检疫规程
3方法原理
桃色欧文氏菌( Erwinia persicina Hao et al.) 属肠杆菌科(Enterobacteriaceae)、欧文氏菌属(Erwinia)。该病菌可以通过种子进行远距离传播。该病菌的生物学、生理生化和分子生物学特性是制定本标准的主要依据(见附录A)。
4仪器设备和用具
4.1仪器设备
生物显微镜、超净工作台、高压灭菌器、离心机、超低温冰箱、常规冰箱、恒温培养箱、PCR仪、电泳设备及其他常规实验室设备。
4.2用具
剪刀、解剖刀、接种针(环)、镊子、玻棒、培养皿、酒精灯、三角烧瓶、量筒、移液器。
5主要试剂
除另有规定外,所有试剂均为分析纯或生化试剂。实验用水应符合GB/T 6682中一级水的规格。
桃色欧文氏菌所用的培养基配方和试剂详见附录B和附录C。
标准内容
中华人民共和国出入境检验检疫行业标准SN/T3965—2014
桃色欧文氏菌检疫鉴定方法
Detection and identification of Erwinia persicina Hao el al2014-04-09发布
中华人民共和国
国家质量监督检验检疫总局
2014-11-01实施
本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草本标准山国家认证认可监督管理委员会提出并归口。本标准起草单位:中华人民共和国广东出人境检验检疫局、江西农业大学。本标推主要起草人:冯黎霞、崔汝强、何日荣、武目涛王卫芳、钟国强。SN/T3965—2014
1范围
桃色欧文氏菌检疫鉴定方法
本标准规定了进出境植物检疫中桃色欧文氏菌的检疫鉴定方法。SN/T3965—2014
本标准适用于可能携带桃色欧文氏菌的水果、种子以及苗木等繁殖材料的检疫和鉴定。2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的,凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法SN/T1809进出境植物种子检疫规程3方法原理
桃色欧文氏菌(Erreinia persicina Hao et al.)属肠杆菌科(Enterobacteriaceae)、欧文氏菌属(Erinia)。该病菌可以通过种子进行远距离传播。该病菌的生物学、生理生化和分子生物学特性是制定本标准的主要依据(见附录A)4仪器设备和用具
4.1仪器设备
生物显微镜、超净工作台、高压灭菌器、离心机、超低温冰箱、常规冰箱、恒温培养箱、PCR仪、电泳设备及其他常规实验室设备。
4.2用具
剪刀、解剖刀、接种针(环)、镊子、玻棒、培养血、酒精灯、三角烧瓶、量筒、移液器。5主要试剂
除另有规定外,所有试剂均为分析纯或生化试剂。实验用水应符合GB/T6682中一级水的规格。桃色欧文氏菌所用的培养基配方和试剂详见附录B和附录C。6
检疫鉴定方法
6.1田间调查和植株检验
田间调查时采集具可疑症状的植株或果实带回实验室,用清水清洗干净,切取病健交界部位的组织,用灭菌水冲洗1次,75%乙醇消毒60s,无菌水冲洗3次,然后将其移至灭菌培养血中,加少量无菌SN/T 3965—2014
水,用无菌玻棒挤压或用无菌剪刀将其剪碎,用接菌环蘸取菌液划线接种于NVA培养基平板[,28℃培养48h。挑取优势单菌落进行纯化。6.2种子处理
对来白桃色欧文氏菌发生国家租疫区(见附录A)的种了按照S.V/T1809的规定进行检疫抽样。随机选取种十15~100g浸泡在无菌水中(按1:5质量体积比),4℃过夜,并用无菌水清洗种子2次,将浸泡液和洗液一并向收至离心管中,然后在4℃下6000g离心10min,去.上清液.沉淀悬浮于2InL菌水中-分别稀释10°、10°10°倍后在1/5NA培养基上涂半板。28℃培养24h-~72h,每天观察菌落生长状况,纯化单菌落。或者取每份种子1000粒用无菌水保凝培养种植于温室或光照培养箱中,生长温度为25℃~28℃,相对湿度大于或等于70%,种子出茵后一周观察植株感病情况。病变组织处理和病原菌分离培养参照6,1。6.3病原菌的分离培养
根据附录A桃色欧文氏菌在 NA培养基上的菌落特征,挑取可疑的单菌落,在KB培养基或NA培养基上划线纯化,28℃培养24h~48h,对可疑分离物的菌落特征进行观察和描述记载,并按照6.4.6.5、6.6步骤操作。
6.4致病性测定
分离纯化的菌株在NA平板上28培养48h后,用无菌水配成10CFTJ/mI.-10°(CFUJ/ml.的新鲜菌悬液,通过针刺或注射等方法接种键康寄主,用无菌水接种健康植株叶片做阴性刘照。置丁光照培养箱内,26℃,相对湿度80%,光照12h,每天观察发病情况。6.5生理生化测定
将可疑分离物菌株进行生理生化试验,其体生理生化指标见附录A。6.6PCR检测
对可菌株进行PCR检测,以桃色欧文氏菌标准菌株作阳性对照,以双蒸水作空白对照,进行PCR扩增.扩增产物进行电泳分析。若可疑菌株与阳性对照扩增有253bl条带,空白对照无条带,回收特异性片段进行测序,并利用Blast 进行序列比对分析。7结果判定
所分离的细菌菌株菌落特征与描述相符,且至少采用致病性测定(见 6.4)、生化试验(见 6,5)、分子生物学(见 6,f)其中两种以上方法的鉴定,复核,结果为阳性若:判定为检出桃色欧文氏菌;否则为末检出。
8样品保存
8,1样品保存与处理
样品经登记和经手人签宰后妥善保存。对检出桃色饮.文氏病菌的样品应保存于1℃冰箱中,以备复核,该类样品保存期满后应经压灭菌后方可处理,2
-iKAONiKAca
菌株保存与处理
SN/T3965—2014
从检测样品中分离并鉴定为桃色欧文氏菌的菌株,应妥善保存。将菌株接种于KB培养基斜面上,28℃培养481,然后4℃冰箱保存,或液体培养至对数牛长期,加人20%灭菌甘油并混勾,-80℃长期保存或用安额管冷冻下燥长期保存。对不需要长期保存的菌株应及时高压火菌处理。9结果资料与记录保存
完整的实验记录包括样品来源,种类、时问,实验的时闽、地点,力法和结果等,并要布检測人员、串核人员的签字。生物学测定需要症状、菌落培养等照片,PCR检测需要电泳照片和序列测定结果。3
-TiKAONiKAca
SN/T3965—2014
A.1名称
附录A
(规范性附录)
桃色欧文氏菌其他信息
学名:Erwinia persicina Hao etal.名:Erwinia persicinus Hao etal.,Erwinia nulandiz Schuster et al.A.2症状特征
豌豆:桃色欧文氏菌可引起豌豆叶片及卷须褪绿坏死,叶片背面有褐色坏死枯斑,有明亮光泽。菜豆:可造成植株萎為,叶片沿叶脉变色、黄化,有坏死斑,在叶片背部有坏死斑点,叶片往往卷曲、畸形,叶片上有明显的疱状突起。在豆英和种子上有坏死斑点。番茄:叶片沿叶脉变色、坏死、干枯,植株蒸秆产生不定根。在发病初期,叶片和茎秆上有很小的紫色斑点,叶背部出现银色坏死斑瓜类:叶片有疱状突起,植株叶片沿叶脉变色、坏死、干枯,植株藤上有损伤病斑。在发病初期,感病植株叶背部出现银色坏死斑,叶片向内卷曲,茎秆上生满不定根,尤其是根部。A.3寄主范围
菜豆(Phaseolusvulgaris
、豌豆(Pisumsatiuum)、棉花(Gossypiumspp.)、葱(Alliumfistulosum)、茄子(Solanummelongena),番茄(Solanumlyepersicum)、黄瓜(Cucumissatiuus)、香蕉(Musaparadisiaca)、水稻(Oryza sativa)、工米(Zea mays)、紫花首(Medicago sativa)等作物。A.4分布
美国、日本、西班牙、澳大利亚等国家和地区5病原菌培养形状及形态特征
细胞为直杆状,菌体大小为(0.5μm~1.0μm)×(1.0μm~3.0μm)。革兰氏染色阴性,无芽孢,无英膜,兼性厌氧型,能运动。最适生长温度为28℃~30℃,36℃能生长,能在5%NaC1营养肉汤中生长。在NA培养基上菌落小,呈桃红色或黄色,圆形,表面凸起,光滑不透明,边缘整齐。A.6
生理生化特性
发酵型,能从葡萄糖、阿拉伯糖、乳糖、棉籽糖、鼠李糖、甘露醇、蔗糖、甘油产酸,不能从木糖、肌醇、松三糖、苦杏仁苷产酸。氧化酶阴性,接触酶阳性。还原硝酸盐。不能液化明胶,不产生吲哚、精氨酸双水解酶、苯丙氨酸脱氨酶以及脲酶。V-P阳性,ONPG阳性。水解酪蛋白。能利用柠檬酸盐。4
-rKAoNiKAca
B.11/5NA培养基(pH7.2)
附录B
(规范性附录)
桃色欧文氏菌常用的培养基配方SN/T3965—2014
蛋白陈10.0g,牛肉膏0.2g,酵母粉0.4g,氯化钠(NaCl)1.0g.琼脂17.0g,蒸馏水1000mL:121℃湿热灭菌20min。
B.2NA培养基(pH7.2)
蛋白陈10.0g,牛肉膏3.0g,酵母粉0.4g,化钠(NaCl)5.g,琼脂17.0g,蒸馏水1000mL,121℃湿热灭菌20min。
KB培养基(pH7.2)
蛋白陈20.0g,甘油10.0g,硫酸镁(MgSO7HLO)1.5g,磷酸氢二钾(K,HPO)1.5g,琼脂15.0g.蒸水1000mL,121℃湿热火菌20min。B.45%营养肉汤(pH7.2)
牛肉膏3.0g,蛋白陈5.0g,氯化钠(NaCl)5.0g·蒸馏水1000mL,121℃湿热灭菌20min。5
-TKAoNiKAca
SN/T 3965—2014
C.1 PCR 反应模板制备
附录C
(规范性附录)
PCK 检测方法
称取感病的植物组织10αmg,放入离心管中加人1mL双蒸水振荡洗涤10min后,吸取[:清液,4000g离心5min,去上清液,加人100μL双蒸水和900μL0.1%的吐溢-80,丁100℃水浴巾煮沸8min,取1.清液作为模板DNA。
或者直接用培养的菌株稀释悬浊液作为模板进行PCR反应。待检测菌落经28C振荡培养24h后,取菌液1nL,400Gg离心5 min,去上清液,加人双蒸水100 uL,于100℃水浴中点沸8nmin,12 oU0 r/min离心5 nin,取上清羧作为模板DNA。2PCK检测
C.,2,1 检测用引物
参考1.Gehring(2012)发表的可引物序列recA-5/recA-5c引物序列为:IccA-5(5'-GTCAT-CATCCTCGACTCCGTA-3'),rccA-5c(5'-CCAGACGGACAGAAGCGTAG-3'),扩增产物253 bP。C.2.2 PCR反应体系
PCR反应体系见表C.1。
表 C.1 PCR反应体系
试剂名称
10XPCR 反应缓冲液
dNTPs (2.5 mmol/1.)
引物 recA-5 (10 mmol/1.)
物ICA-5(10IInOl/L)
Ta DNA 聚合酶( U/L)www.bzxz.net
DNA模板
补ddH,至
C.2.3PCR 反应程序
95 /3 min; 94 ℃/30 s,63 ℃/30 s,72 ℃/30 s.# 10 循环,94 /30 s,58 C/30 s,72 ℃/30 s20循环;72℃/10min。
注:不同仪器可报据仪器要求将反应参数作适当调整6
-iKAoNiKAca
C.2.4PCK反应扩增产物的检测
SN/T39652014
将 5 tL PCR产物用 12 g/ L琼脂糖凝胶电泳分离.经 DNA染料染色后于紫外凝胶成像系统下根据扩增产物的大小判定结果,并拍照,记录实验结果。PCR产物经纯化后,送生物公司测序。PCR产物测序,测序结果与GenBeank中的已知序列进行T3last 比较。SN/T3965—2014
参考文献
[1] Brenncr I J, Kricg N R, Staley J T.Bergey's tnanual of systeineitic bacteriology (2nd ed.)『M..USA:Springcr:2005:67ii-678.[2] Brcnner D J, Rodrigues N J, Sieigerwalt A G, el al.\Ewinia nutundii\ is & subjeciive synonymi of Frinit persicinus .Jj. International Uniun of Micrubiological Soeieties, lgg4. Af (2):282-284.
L3] (Gonzalez A J, Tello I C, M de Cara.First report of Fresiniu persicinu froni Phaseotus wut.guris in SpaintJl.Plant Dinrast, 20o!. xu(J): lo.[4] Gonzaler A J, Tello I C, Radieio M R.Frunniu perstim causing rhlorosis ad nceralic: spots inIcaves Hnd tendrils of Pisum sutitmrm in Southersiern Spain[jl.Plent Disc:ase, 2007, l(4) :4t0.L5J Hao M V, RBrerner D J, Steigerwall A G, el al.Hrurinu persicinms, a new spcrirs isolatcdfrotl plantsLI_.Imernalignal Union of Mecrrbiologiral Scetir:s, 390, 40(4) : 37!-s83.i6 I.Gehring, K.Geider.ldentification of Erwinia sperics isolated from epples and pears ly dif-ferential PCR_Jl.Journal of Microbiulrgieal Methods, 2012, (89): 57 62.
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