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SN/T 4675.6-2016

基本信息

标准号: SN/T 4675.6-2016

中文名称:出口葡萄酒中葡萄糖、果糖和蔗糖的测定

标准类别:商检行业标准(SN)

标准状态:现行

出版语种:简体中文

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相关标签: 出口 葡萄酒 葡萄糖 果糖 蔗糖 测定

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标准简介

SN/T 4675.6-2016.Determination of glucose , fructose and sucrose in wine for export.
1范围
SN/T 4675.6规定了葡萄酒中葡萄糖、果糖、蔗糖的测定方法。
SN/T 4675.6适用于葡萄酒中葡萄糖、果糖、蔗糖的测定。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法
3方法提要
试样中的葡萄糖、果糖、蔗糖用水稀释后,经0.22 μm滤膜过滤,离子色谱法测定稀释液,通过阴离子交换分离后,进行电化学检测分析,保留时间定性、外标法定量。
4试剂和材料
4.1氢氧化钠溶 液(50%):称取50 g氢氧化钠(4.1),用水溶解后,全部转移至100 mL容量瓶,放凉后用水定容至刻度,转移至试剂瓶中。
4.2葡萄糖标准储 备溶液(2 mg/mL):称取葡萄糖(4.2)0.1 g(精确到0.1 mg),溶于水,转移至50 mL容量瓶中,用水稀释定容至刻度,转移至试剂瓶中。
4.3果 糖标准储备溶液(2 mg/ mL) :称取果糖(4.3)0.1 g(精确到0.1 mg),溶于水,转移至50 mL容量瓶中,用水稀释定容至刻度,转移至试剂瓶中。
4.4蔗糖标准储备溶液(2 mg/mL):称取蔗糖(4.4)0.1 g(精确到0.1 mg),溶于水,转移至50 mL容量瓶中,用水稀释定容至刻度,转移至试剂瓶中。
4.5混合标准储备 液(500 mg/L):分别移取25.0 mL葡萄糖(4.6)、果糖(4.7)、蔗糖(4.8)单一标准储备液于100mL容量瓶,用水稀释定容至刻度,转移至试剂瓶中。

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标准内容

中华人民共和国出入境检验检疫行业标准SN/T4675.6—2016
出口葡萄酒中葡萄糖、果糖和蔗糖的测定Determination of glucose,fructose and sucrose in wine for export2016-12-12发布
中华人民共和国
国家质量监督检验检疫总局
2017-07-01实施
SN/T4675《出口葡萄酒质量安全分析方法》共分为30个部分:SN/T4675.1
-SN/T4675.2
SN/T4675.3
SN/T4675.4
-SN/T4675.5
SN/T4675.6
-SN/T 4675.7
SN/T4675.8
SN/T4675.9
SN/T4675.10此内容来自标准下载网
SN/T4675.11
-SN/T4675.12
SN/T4675.13
SN/T4675.14
SN/T4675.15
SN/T4675.16
SN/T4675.17
SN/T 4675.18
SN/T4675.19
SN/T4675.20
SN/T4675.21
SN/T4675.22
SN/T4675.23
-SN/T4675.24
SN/T4675.25
SN/T4675.26
SN/T4675.27
-SN/T4675.28
SN/T4675.29
SN/T4675.30
出口葡萄酒中甘油的测定酶法;出口葡萄酒中2,3-丁二醇的测定气相色谱法;出口葡萄酒中乙醇稳定碳同位素比值的测定;出口葡萄酒中乳酸的测定酶法;出口葡萄酒中有机酸的测定离子色谱法;出口葡萄酒中葡萄糖、果糖和煎糖的测定;出口葡萄酒中乙醛的测定气相色谱-质谱法;出口葡萄酒中5-羟甲基糠醛的测定液相色谱法:出口葡萄酒中二甘醇的测定气相色谱-质谱法;SN/T4675.6—2016
出口葡萄酒中赭曲霉毒素A的测定液相色谱-质谱/质谱法;出口葡萄酒中7种花色苷的测定超高效液相色谱法;出口葡萄酒中溶菌酶的测定液相色谱法:出口葡萄酒中2,4,6-三氯苯甲醚残留量的测定气相色谱-质谱法:出口葡萄酒中纳他霉素的测定液相色谱-质谱/质谱法:出口葡萄酒中水杨酸、脱氢乙酸和对氯苯甲酸的测定液相色谱法;出口葡萄酒中富马酸的测定液相色谱-质谱/质谱法;出口葡萄酒中丁基锡含量的测定气相色谱-质谱/质谱法;出口葡萄酒中二硫代氨基甲酸酯残留量的测定顶空气相色谱法;出口葡萄酒中钠、镁、钾、钙、铬、锰、铁、铜、锌、砷、硒、银、、铅的测定;出口葡萄酒中稀土元素的测定电感耦合等离子体质谱法:出口葡萄酒中可溶性无机盐的测定离子色谱法;出口葡萄酒中总二氧化硫的测定比色法;出口葡萄酒及葡汁中氨氮的测定连续流动分析仪法;出口葡萄酒福林-肖卡指数的测定分光光度计法:出口葡萄酒颜色的测定CIE1976(Lab)色空间法;出口葡萄酒浊度的测定散射光法;出口葡萄酒碱性灰分的测定;
出口葡萄酒细菌、霉菌及酵母的计数;出口葡萄酒中酒香酵母检验实时荧光PCR法;出口葡萄酒中拜氏接合酵母检验实时荧光PCR法。本部分为SN/T4675的第6部分。
本部分按照GB/T1.1一2009给出的规则起草。本部分第二法酶法修改采用国际葡萄与葡萄酒组织(OIV)的方法OIV-MAAS311-02《葡萄糖和果糖》。
本部分增加了蔗糖的测定方法。本部分在技术内容上与该方法一致,但考虑到我国标准本身的特点和汉语表达习惯,以及结合所采用的试剂、仪器等实际情况,对OIV的方法AS31102的构架,个别内容仅作了编辑性修改。
SN/T4675.6—2016
请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任本部分由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。本部分起草单位:中华人民共和国中山出入境检验检疫局、中华人民共和国上海出人境检验检疫局、中华人民共和国广东出人境检验检疫局、完美(中国)有限公司。本部分主要起草人:李蓉、冯雪雅、倪昕路、秦宇雯、麦文希、汪侃晨、陈章庭、郁晓艺、梁淑明、刘青李志勇。
1范围
出口葡萄酒中葡萄糖、果糖和蔗糖的测定SN/T4675的本部分规定了葡萄酒中葡萄糖、果糖、燕糖的测定方法。本部分适用于葡萄酒中葡萄糖、果糖、蔗糖的测定。2规范性引用文件
SN/T4675.6—2016
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法法离子色谱法
3方法提要
试样中的葡萄糖、果糖、煎蔗糖用水稀释后,经滤膜过滤,离子色谱法测定稀释液,通过阴离子交换分离后,进行电化学检测分析,保留时间定性、外标法定量。4试剂和材料
除另有规定外,所用试剂均为分析纯,试验用水为GB/T6682规定的一级水。
4.1氢氧化钠(NaOH):CAS号1310--23-2。
4.2葡萄糖[CH.OH(CHOH),CHO]:CAS号50-99-7:纯度≥99%:在107℃±3℃烘箱中干燥3h。4.3果糖(CH1zO.CO)CAS号57-48-7:纯度≥99%,在96℃±℃烘箱中干燥2h。
4.4蔗糖(CzHz2O,)CAS号57-50-1;纯度≥99%;在105℃±2℃烘箱中干燥2h。4.5氢氧化钠溶液(50%):称取50g氢氧化钠(4.1),用水溶解后,全部转移至100ml.容量瓶,放凉后用水定容至刻度,转移至试剂瓶中。4.6葡萄糖标准储备溶液(2mg/mL):称取葡萄糖(4.2)0.1g(精确到0.1mg),溶于水,转移至50mL容量瓶中,用水稀释定容至刻度,转移至试剂瓶中。4.7果糖标准储备溶液(2mg/mL):称取果糖(4.3)0.1g(精确到0.1mg),溶于水,转移至50mL容量瓶中,用水稀释定容至刻度,转移至试剂瓶中。4.8蔗糖标准储备溶液(2mg/mL):称取蔗糖(4.4)0.1g(精确到0.1mg),溶于水,转移至50mL容量瓶中,用水稀释定容至刻度,转移至试剂瓶中。4.9混合标准储备液(500mg/L):分别移取25.0mL葡萄糖(4.6)、果糖(4.7)、蔗糖(4.8)单一标准储备液于100mL容量瓶,用水稀释定容至刻度,转移至试剂瓶中。4.10滤膜:0.22μm,水系。
-KAONKAca
SN/T4675.6—2016
5仪器和设备
5.1离子色谱仪:带电化学检测器5.2分析天平:感量0.1mg。
5.3电热恒温干燥箱。
5.4水平振荡器。
5.5超声波水浴。
6测定步骤
6.1样品前处理
干、半干葡萄酒(起泡酒需预先脱气,将100mL试样在空温下使用水平振荡器或超声波水浴脱气,直至无气泡逸出):准确移取0.50mL样品(液温20℃)于100mL容量瓶中,用水稀释定容至刻度,振荡摇匀后作为样品稀释溶液备用半甜、甜葡萄酒(起泡酒需预先脱气,将100mL试样在室温下使用水平振荡器或超声波水浴脱气,直至无气泡逸出):准确移取10mL样品(液温20℃)于1000mL容量瓶中,用水稀释定容至刻度,振荡摇勾后再吸取10mL稀释液至100mL.容量瓶中,用水稀释定容至刻度,振荡摇匀后作为样品稀释溶液备用。
同时吸取2份试样,进行平行测定。6.2混合系列标准工作溶液制备
分别移取0.1ml.,0.2mL,0.5ml,0.8ml1.2ml.,1.4mL,2.0mL混合标准储备液(4.9)于50ml容量瓶中,用水稀释定容至刻度,相应浓度分别为1.0mg/L,2.0mg/L,5.0mg/L,8.0mg/L,12.0mg/L,14.0mg/L,20.0mg/L的葡萄糖、果糖、糖混合系列标准工作溶液。6.3测定
6.3.1离子色谱参考条件
设定的参数应保证色谱测定时被测组分与其他组分能够得到有效的分离,下列给出的参数已被证明是可行的。
色谱柱:PA1型阴离子分离柱(4mm×250mm)和PAl型保护柱(4mm×50mm),或相a)
当者。
柱温箱温度:30℃。
淋洗液:40mmol/LNaOH。
淋洗液流速:l.0ml/min。
检测器:电化学检测器,脉冲安培检测模式。f
进样量:25#L
流动相:
流动相A:水;
流动相B:氢氧化钠溶液,200mmol/L。移取10.4mL氢氧化钠溶液(4.5)至1000mL容量瓶,用水稀释定容至刻度,转移至试剂瓶中。h)淋洗液洗脱程序见表1。
TKAONKAca
时间/min
6.3.2工作曲线绘制
表1淋洗液洗脱程序
流动相A/%
SN/T4675.6—2016
流动相B/%
按6.3.1设定色谱工作条件,待仪器稳定后,依次测定混合系列标准工作溶液(6.2)中的葡萄糖、果糖、蔗糖的色谱峰面积。根据标准工作溶液中葡萄糖、果糖、蔗糖的浓度和相应峰面积绘制葡萄糖、果糖、蔗糖的浓度-色谱峰面积标准曲线。6.3.3样品稀释溶液中葡萄糖、果糖、蔗糖的测定吸取适量摇匀后的样品稀释溶液(6.1),经滤膜(4.10)净化后移人色谱瓶,按与6.3.1相同的分析条件对净化后的样品稀释溶液进行测定,根据色谱保留时间和峰面积对葡萄糖、果糖、蔗糖进行定性和定量。葡萄糖、果糖、蔗糖典型离子色谱图参见附录A。注:如试样中的糖含量高,超出标准工作曲线的浓度范围,应以水适当稀释。6.4空白试验
除不加试样外,按上述步骤进行空白试验。7结果计算和表述
7.1试样中葡萄糖、果糖、蔗糖含量按式(1)计算:(c,-c)XV.Xf
V1X1000
式中:
试样中葡萄糖、果糖、蔗糖的含量,单位为克每升(g/L);.(1)
从工作曲线求得的样品稀释溶液中葡萄糖、果糖、蔗糖含量,单位为毫克每升(mg/L);从工作曲线求得的空白溶液中葡萄糖、果糖、蔗糖含量,单位为毫克每升(mg/L);试样定容体积,单位为毫升(mL);样品稀释倍数;
试样取样体积,单位为毫升(mL)。结果保留三位有效数字。
方法的测定范围和回收率
测定范围
本方法测定范围为0.200g/L~200g/L3
-riKAoNiiKAca
SN/T4675.6—2016
8.2回收率
本方法红葡萄酒和白葡萄酒的葡萄糖、果糖在0.2g/L,4g/L,12g/L.45g/L四个添加浓度水平范围内回收率为97.0%~103%;起泡葡萄酒的葡萄糖在15g/1.30g/L,45g/L.90g/L四个添加浓度水平范围内回收率为96.4%101%;果糖在12g/L,45g/L,65g/L,90g/L四个添加浓度水平范围内回收率为97.9%~102%;本方法蔗糖在0.2g/I,10g/L,15g/L三个添加浓度水平范围内回收率为:96.9%~101%.
9重复性
以两次平行测定结果的算术平均值作为测定结果,两次平行测定结果的绝对差值不得超过其算术平均值的10%。
10方法提要!
试样中的葡萄糖在已糖激酶(HK)的作用下,与三磷酸腺(ATP)进行反应,生成6-磷酸葡萄糖(G6P)。6-磷酸葡葡糖(G6P)又在6磷酸葡萄糖脱氢酶(G6PDH)存在的情况下,被烟酰胺嘌岭双核苷酸磷酸(NADP)氧化成6磷酸葡萄糖酸·并生成还原型烟酰胺颗呤双核苷酸(NADPH)。烟酰胺嘌呤双核苷酸(NADPH)的数量与6磷酸葡萄糖的量存在对应关系,即与试样中的葡药糖含量存在对应关系。还原型烟酰胺嘌呤双核苷酸(NADPH)在340nm有特征吸光度,其含量可按其吸光度变化而测定。试样中的D果糖在已糖激酶(HK)的作)用下,与
磷酸腺替(ATP)进行反应,生成6磷酸果糖(F6P)。6-磷酸果糖(F6P)在磷酸葡萄糖异构酶(PGI)的作用下转化成6磷酸葡萄糖(G6P)。6-磷酸葡萄糖(G6P)再按上述葡萄糖的一系列反应机理反应和测定转化为D葡药糖和D果
试样中的蔗糖在β果糖甘酶的作用下糖,然后按上述反应测得试样中总葡系数后得出试样中蔗糖的含量。萄糖含量,再减去未转化前原有葡萄糖的含量,乘以转换系
Glucose
Fruetosa
G6P+NADP++
11试剂和材料
Gluconate-6-phosphat
NADPH+H+
除非另有说明,所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的二级水。1)非商业性声明:第二法酶法试验是在美国ThermofisherArena2Q全自动葡萄酒分析系统上完成,所用试剂均为商品化试剂:
D-Glucose反应试剂(Thermofisher,REF:984304)D-Fructose反应试剂(Thermofisher,REF:984302)Sucrose(TotalGlucose)反应试剂(Thermofisher,REF:984312)此处列出试验用仪器型号和试剂货号仅为提供参考,并不涉及商业月的,鼓励标准使用者尝试不同厂家或型号的仪器和试剂。
-rKAoNKAca
11.1盐酸三乙醇胺:CAS号637-39-8。11.2硫酸镁:MgS0·7H.0。
11.3氢氧化钠。
:磷酸烟酰胺嘌呤二核苷酸二钠:CAS号24292-60-2,纯度≥99.5%。11.5
5-三磷酸腺苷二钠:CAS号51963-61-2、纯度≥98%。碳酸氢钠。
已糖激酶:CAS号9001-51-8,纯度≥95%。11.8
6-磷酸葡萄糖脱氢酶:CAS号9001-40-5。11.9
磷酸葡萄糖异构酶(PGD):CAS号9001-41-6。11.10
βB-果糖苷酶:CAS号9001-57-4,纯度≥95%D-葡萄糖反应试剂。
试剂1:将以下试剂按25:1:1比例,临用混合。SN/T4675.6—2016
缓冲溶液(0.3mol/L三乙醇胺.pH-7.6.cLMg+=0.004mol/L):将11.2g盐酸三乙醇胺(11.1)和0.2gMgSO.7HO(11.2)溶于150ml水中,加人4mL5mol/L的氢氧化钠(11.3)溶液,调至pH至7.6,加水定容至200mL。此缓冲溶液在4℃条件下可保存4周。
烟酰胺嘌呤双核苷酸磷酸溶液(0.0115mol/L):将50mg磷酸烟酰胺嘌呤二核苷酸二钠2)
(11.4)溶于5mL水中。此缓冲溶液在4℃条件下可保存4周三磷酸腺苷溶液:将250mg5-三磷酸腺苗二钠(ll.5)和250mg碳酸氢钠(11.6)溶于3)
5mL水中。此缓冲溶液在4℃条件下可保存4周b)试剂2:已糖激酶/6-磷酸葡萄糖脱氢酶溶液:将0.5mL已糖激酶(11.7)(每毫升含2mg蛋白质,或280U/mL)与0.5mL6-磷酸葡萄糖脱氢酶(11.8)(每毫升含1mg蛋白质)混合。此缓冲溶液在4℃条件下可保存1年
11.12D-果糖反应试剂:
a)试剂1:同11.1la)。
试剂2:同11.11b)。
试剂3。
缓冲溶液(0.3mol/L.三乙醇胺·pH7.6.cMg+
0.004mol/L):同11.11a)1)。
磷酸葡萄糖异构酶溶液(PGI)(11.9)(每毫升含2mg蛋白质,或700U/mL)。2)
蔗糖(总葡萄糖)反应试剂:
试剂1:1.0%的β果糖苷酶水溶液(25kU/L)。a)
试剂2:同11.11a)。
试剂3:同11.11b)。
11.14D-葡萄糖[CH,OH(CHOH),CHO]:CAS号50-99-7,纯度≥99.5%。11.15D-果糖(CH0,CO):CAS号57-48-7纯度≥99.0%。11.16
蘑糖(CH..O.):CAS号57-50-1.纯度≥99.5%11.17D-葡萄糖标准储备液(50g/L):准确称取5.0g(精确至0.1mg)D-葡萄糖标准品(11.14),用水溶解并定容至100mL。
11.18D-果糖标准储备液(50g/1.):准确称取5.0g(精确至0.1mg)D-果糖标准品(11.15),用水溶解并定容至100mL。
11.19蔗糖标准储备液(50g/L):准确称取5.0g(精确至0.1mg)蔗糖标准品(11.16),用水溶解并定容至100ml.
11.20D-葡萄糖标准工作液(5.0g/L):准确吸取10mLD葡萄糖标准储备液(11.17),用水稀释并定容S
-TKAONiKAca
SN/T4675.6—2016
至100mL,混匀备用。
11.21D-果糖标准工作液(5.0g/L)准确吸取10mLD-果糖标准储备液(11.18),用水稀释并定容至100mL,混匀备用。
11.22蔗糖标准工作液(5.0g/L):准确吸取10mL蔗糖标准储备液(11.19),用水稀释并定容至100mL,混匀备用。
仪器和设备
12.1分光光度计:可满足340nm波长测定,或可满足测试的相当者。12.2比色血:1cm或其他适当规格。12.3天平:感量1mg,0.1mg。
12.4水平振荡器。
超声波水浴。
试样制备
平静葡萄酒:混勾后直接测定
2起泡葡萄酒:需预先脱气,将100mL试样在室温下使用水平振荡器或超声波水浴脱气,直至无13.2
气泡逸出。
14分析步骤
14.1标准物质定标(标准曲线)14.1.1D-葡萄糖标准曲线:准确吸取D葡萄糖标准工作液(11.20)0.0mL0.5mL,1.0mL、2.0mL、2.5mL、5.0mL于10mL容量瓶中,用水稀释并定容至刻度线。在比色Ⅲ中加人100μLD-葡萄糖反应试剂1[11.11a)]和5uL标准溶液,37℃孵育120s,在340nm条件下依次测定其吸光度A,。随后加入25μL反应试剂2[11.11b),37℃孵育420s,最后在340nm条件下依次测定其吸光度A+,以D葡萄糖浓度和对应的吸光度差值(A1一A。)绘制标准曲线。14.1.2D-果糖标准曲线:准确吸取D果糖标准工作液(11.21)0.0ml、0.5mL、1.0mL、2.0mL、2.5mL、5.0mL于10mL容量瓶中,用水稀释并定容至刻度线。在比色Ⅲ中先加人100uLD果糖反应试剂1[11.12a)和5μL标准溶液,随后加人25μL反应试剂2[11.12b).37℃孵育300s,在340nm条件下依次测定其吸光度A。。再加入25uL反应试剂3[11.12c),37℃孵育420s,最后在340nm条件下依次测定其吸光度A1,以D-果糖浓度和对应的吸光度差值(A,一A。绘制标准曲线14.2
样品测定
试样稀释:视试样中的实际总含糖量,按表2比例用水稀释后,混匀,待测。表2试样稀释比例
总含糖量范围/(g/L)
预稀释比例
2D葡萄糖测定:在比色Ⅲ中加入100μLD葡萄糖反应试剂1L11.11a)和5μL试样,37℃孵育14.2.2
120s.在340nm条件下依次测定其吸光度As。随后加人25uL反应试剂2[11.11b)1,37℃孵育SN/T4675.6—2016
420s,最后在340nm条件下测定其吸光度Asl,以吸光度差值(A-A)按标准曲线计算试样中D-葡萄糖的含量
14.2.3D-果糖测定:在比色血中加人100μLD果糖反应试剂1[11.12a)和5uL试样,37℃孵育1205,在340nm条件下依次测定其吸光度A。随后加人25uL反应试剂2[11.12b),37℃孵育420s,最后在340nm条件下测定其吸光度A.1,以吸光度差值(A.一A)按标准曲线计算试样中D果糖的含量。
14.2.4煎糖测定:在比色Ⅲ中先加入100μL.蔗糖反应试剂1[11.13a)]和5μL试样,37℃孵育300s,随后加人25uL反应试剂2[11.13b),37℃孵育120s,在340nm条件下依次测定其吸光度A。最后加人25μL反应试剂3[11.13c)],37℃孵育420s,最后在340nm条件下测定其吸光度A1。以吸光度差值(A。一A。)按标准曲线计算试样中总葡萄糖的含量。然后结合14.2.1测得的D-葡葡糖含量用式(2)计算试样中蔗糖的含量。
结果的计算和表述
15.1试样中D-葡萄糖、D-果糖含量用软件处理或按式(2)计算:X=CXR
式中:
葡萄酒试样中D-葡萄糖(或D-果糖)的含量,单位为克每升(g/L);上机试液中D葡萄糖(或D果糖)的含量,单位为克每升(g/L);试样的稀释倍数。
蔗糖含量用软件处理或按式(3)计算:X2=(X,-X)×1.90Xk
式中:
葡萄酒试样中蔗糖的含量,单位为克每升(g/L):葡萄酒试样中总葡萄糖的含量,单位为克每升(g/L);葡萄酒试样中D-葡萄糖的含量,单位为克每升(g/L)摩尔质量比(蔗糖/葡萄糖),即342.30/180.16=1.90;试样的稀释倍数。
2结果保留三位有效数字。
方法的测定范围和回收率
16.1测定范围
本方法的测定范围为0.500g/L~200g/L。16.2回收率
·(3)
本方法红葡萄酒、白葡萄酒和气泡葡萄酒的葡萄糖、果糖和蔗糖的各水平的添加回收率范围参见附录B的表B.2、表B.3、表B.4。
17重复性
以两次平行测定结果的算术平均值作为测定结果,两次平行测定结果的绝对差值不得超过其算术平均值的10%。
SN/T4675.6-—2016
附录A
(资料性附录)
葡萄糖、果糖和蔗糖的典型离子色谱图葡萄糖、果糖和蔗糖的典型离子色谱图见图A.1葡萄糖、果糖和蕉糖4101
1葡葡糖8.800
2果糖10.56
std3-1
3·麓籍16.284
图A.1葡萄糖、果糖和蔗糖的典型离子色谱图(5mg/L)8
回收率数据见表B.1~表B.4
附录B
(资料性附录)
两种方法的回收率数据
SN/T4675.6—2016
离子色谱法不同基质中葡萄糖、果糖、蔗糖不同添加水平回收率数据典型基质
红葡萄酒
白葡萄酒
起泡葡萄酒
检测项目
葡萄糖
葡萄糖
葡萄糖
添加水平/(g/L)
平均回收率/%
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